Lambda核酸外切酶

作用于雙鏈 DNA，沿 5′→3′方向逐步切去 5′單核苷酸。適底物是 5′磷酸化的雙鏈DNA，也能緩慢降解單鏈 DNA 和非磷酸化底物。該酶不能從 DNA 的切刻或缺口處起始消化。

活性定義：1 單位指在 50 μl 反應體系中，37℃條件下，30分鐘內能從雙鏈 DNA 底物上催化產生 10 nmol 酸溶性脫氧核糖核苷酸所需的酶量。
使用注意事項
（1）1×Lambda Exo Buffer：67 mM Glycine-KOH（pH 9.4@ 25℃），2.5 mM MgCl2，50 μg/ml BSA，37℃溫育。
（2）該酶的反應溫度為 37°C，75°C 10min 可失活。
（3）5′-0H 端的切割速度比 5′-PO4端慢 20 倍，單鏈 DNA 比雙鏈 DNA 慢 100 倍。
操作方法：
1.配置反應體系如下：
DNA 2~5 μg
10×Lambda Exo Buffer 5 μl
Lambda Exonuclease 1 μl
ddH2O upto 50 μl
2. 37℃反應 30min 。
3. 75℃ 10min 進行熱失活。

一、模板DNA：PCR反應需要模板DNA，如從細胞、組織、血液中提取DNA等；

二、引物：PCR反應的兩個引物，分別與模板DNA的兩端配對擴增所需的特定區域，引物也可以合成為TA克隆等過程中使用到的引物；

三、dNTPs：PCR反應中需要四種dNTPs，包括脫氧腺苷酸（dATP）、脫氧胸苷酸（dCTP）、脫氧鳥苷酸（dGTP）、脫氧胞嘧啶酸（dTTP），用于細胞分裂、DNA合成         等生物學過程，用于PCR擴增的模板DNA鏈的延伸和擴增；

四、Taq DNA聚合酶：PCR反應需要的聚合酶，一般使用Taq聚合酶，還有一些其他種類的聚合酶如PFU、Phusion等，用于擴增DNA鏈；

五、PCR buffer溶液：對PCR反應具有緩沖作用，調節反應pH，硫代硫酸氫鹽SDS、小分子有機化合物如甲醛，可增強PCR反應特異性，從而提高反應效率；

六、酶切體系：PCR擴增往往涉及到重組、構建和測序等等實驗步驟，常常需要進行酶切操作。

七、MARK:一種分子量標準，用來判別DNA片段大小的工具。

八、DNA純化試劑盒：用于純化PCR反應產物；

①Oligo dT
選擇Oligo dT時，要求RNA必須有Poly A，所以真核生物的mRNA都適用。適合長鏈甚至全長mRNA的RT，對RNA樣品的質量要求較高，不要有明顯的DNA污染、RNA降解和RNA斷裂。假如想探索新的mRNA進行RT反應，建議推薦使用Oligo dT引物。使用Oligo dT引物要比隨機引物和特異性引物的穩定性要好。
②隨機引物
適合各種RNA的RT，尤其適合模板豐度很低的情況（比如某個gene表達量很低）。選擇隨機引物時，第鏈cDNA合成反應中就是以所有的RNA為模板，然后進行PCR反應時設計引物進行特異性擴增。同時要注意隨機引物的量和總RNA量之間的關系，一般建議每5µg總RNA的隨機引物的用量為50ng，如果每5µg總RNA的隨機引物的用量超過250ng，可能會導致小片段產物（＜500bp）的增加和長片段、全長產物的降低。
③特異性引物
基因特異性引物（GSP）是某個基因序列的一部分，與模板互補的引物。該引物需要結合目標RNA的已知序列進行設計。由于引物和RNA序列特異性結合，每個目標RNA都需要一套新的基因特異性引物。因此，當分析多種目標時，則需要適用更多的RNA樣本。而且不同引物退火溫度本來就不相同，所以一般不推薦使用。如需要使用特異性引物，建議對退火溫度進行優化。