（1）眼眶靜脈叢采血 采血者的左手拇食兩指從背部較緊地握住小鼠或大鼠的頸部（大鼠采血需帶上紗手套），應防止動物窒息。當取血時左手拇指及食指輕輕壓迫動物的頸部兩側，使眶后靜脈叢充血。右手持續接7號針頭的1ml注射器或長頸（3～4cm）硬質玻璃滴管（毛細管內徑0.5-1.0mm），使*與鼠面成45℃的夾角，由眼內角刺入，針頭斜面先向眼球，刺入后再轉180度使斜面對著眼眶后界。刺入濃度，小鼠約2～3mm，大鼠約4～5mm。當感到有阻力時即停止推進，同時，將針退出約0.1-0.5mm，邊退邊抽。若穿刺適當血液能自然流入毛細管中，當得到所需的血量后，即除去加于頸部的壓力，同時，將*拔出，以防止術后穿刺孔出血。 若技術熟練，用本法短期內可重復采血均無多大困難。左右兩眼輪換更好。體重20-25g的小鼠每次可采血 0.2-0.3ml；體重200-300g大鼠每次可采血0.5-1.0ml，可適用于某些生物化學項目的檢驗。

（2）斷頭取血 采血者的左手拇指和食指以背部較緊地握住大（小）鼠的頸部皮膚，并作動物頭朝下傾的姿勢。右手用剪刀猛剪鼠頸，約1/2-4/5的頸部前剪斷，讓血自由滴入盛器。小鼠可采用約0.8～1.2ml;大鼠約5-10ml。

（3）鼠尾刺血法 大鼠用血量不多時（僅做白細胞計數或血紅蛋白檢查），可采用本法。先將鼠尾用溫水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7號或8號注射針頭，刺入鼠尾靜脈，拔出針頭時即有血滴出，一次可采集10～50mm3。如果長期反復取血，應先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐漸向近心端穿刺。

（4）割（剪）尾采血 當所需血量很少時采用本法。固定動物并露出鼠尾。將尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的溫水中數分鐘，使尾部血管充盈。再將尾擦干，用銳器（刀或剪刀）割去尾尖0.3-0.5cm，讓血液自由滴入盛器或用血紅蛋白吸管吸取，采血結束，傷口消毒并壓迫止血。也可在尾部作一橫切口，割破尾動脈或靜脈，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。

（5）心臟采血 鼠類的心臟較小，且心率較快，心臟采血比較困難，故少用。活體采血方法與豚鼠相同。若做開胸一次死亡采血，先將動物作深麻醉，打開胸腔，暴露心臟，用針頭刺入右心室，吸取血液。小鼠約0.5-0.6ml；大鼠約0.8-1.2ml。

（6）頸動靜脈采血 先將動物仰位固定，切開頸部皮膚，分離皮下結締組織，使頸靜脈充分暴露，可用注射器吸出血液。在氣管兩側分離出頸動脈，離心端結扎，向心端剪口將血滴入試管內。

（7）股動（靜）脈采血 先由助手握住動物，采血者左手拉直動物下肢，使靜脈充盈。或者以搏動為指標，右手用注射器刺入血管。體重15-20g 小鼠采血約0.2-0.8ml，大鼠約0.4-0.6ml。

（8）腹主動脈采血 先將動物麻醉，仰臥固定在手術架上，從腹正中線皮膚切開腹腔，使腹主動脈清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用無齒鑷子剝離結締組織，夾住動脈近心端，用尖頭*刀，剪斷動脈，使血液噴入盛器。