首先引物設計
引物設計有3 條基本原則：首先引物與模板的序列要緊密互補，其次引物與引物之間避免形成穩定的二聚體或發夾結構，再次引物不能在模板的非目的位點引發DNA 聚合反應(即錯配)。
具體實現這3 條基本原則需要考慮到諸多因素，如引物長度（primer length），產物長度 （product length），序列Tm 值 (melting temperature)，引物與模板形成雙鏈的內部穩定性(internal stability, 用ΔG 值反映)，形成引物二聚體(primer dimer)及發夾結構（duplex formation and hairpin）的能值，在錯配位點（ false priming site ） 的引發效率， 引物及產物的GC 含量（composition），等等。必要時還需對引物進行修飾，如增加限制性內切酶位點，引進突變等。根據有關參考資料[24]，引物設計應注意如下要點：
（1）引物的長度一般為15-30 bp，常用的是18-27 bp，但不應大于38，因為過長會導致其延伸溫度大于74℃，不適于taq DNA 聚合酶進行反應。
（2）引物序列在模板內應當沒有相似性較高，尤其是3’端相似性較高的序列，否則容易導致錯配。引物3’端出現3 個以上的連續堿基，如GGG 或CCC，也會使錯誤引發機率增加。
（3）引物3’端的末位堿基對Taq 酶的DNA 合成效率有較大的影響。不同的末位堿基在錯配位置導致不同的擴增效率，末位堿基為A 的錯配效率明顯高于其他3 個堿基，因此應當避免在引物的3’端使用堿基A。另外，引物二聚體或發夾結構也可能導致PCR 反應失敗。5’端序列對PCR 影響不太大，因此常用來引進修飾位點或標記物。
（4）引物序列的GC 含量一般為40-60%，過高或過低都不利于引發反應。上下游引物的GC 含量不能相差太大。
（5）引物所對應模板位置序列的Tm 值在72℃左右可使復性條件。Tm 值的計算有多種方法，如按公式Tm＝4(G+C)＋2(A+T)，在Oligo 軟件中使用的是zui鄰近法(the nearest neighbor method) 。
（6）ΔG 值是指DNA 雙鏈形成所需的自由能，該值反映了雙鏈結構內部堿基對的相對穩定性。應當選用3’端ΔG 值較低（值不超過9），而5’端和中間ΔG 值相對較高的引物。引物的3’端的ΔG 值過高，容易在錯配位點形成雙鏈結構并引發DNA 聚合反應。
（7）引物二聚體及發夾結構的能值過高（超過4.5kcal/mol）易導致產生引物二聚體帶，并且降低引物有效濃度而使PCR 反應不能正常進行[8]。
（8）對引物的修飾一般是在5’端增加酶切位點，應根據下一步實驗中要插入PCR 產物的載體的相應序列。

1.1.1 PCR 的引物設計
首先從GenBank 查到VI 型膠原蛋白的α1 鏈的mRMA 序列，序列號為 NM_001848.其序列長為 4164bp，其中98 到3184 為VI 型膠原蛋白的α1鏈的編碼序列，98 到865 編碼VI 型膠原蛋白的α1 鏈的氨基端球狀結構域，
866 到1873 編碼膠原的三股螺旋結構域，1874 到3181 編碼VI 型膠原蛋白的α1 鏈的羧基端球狀結構域。
接著采用Primer Premier 5.0 進行引物設計，設計結果如下：

我的RT

我的RT 
圖2-1 Primer Premier 5.0 進行引物設計
由表中可知引物的GC 含量較高，擴增的片斷較長，而且存在錯配和引
物二聚體，在進行PCR 擴增時存在一定的困難。