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多激發波長調制葉綠素熒光儀——Multi-Color-PAM

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產品簡介

多激發波長調制葉綠素熒光儀——Multi-Color-PAM主要功能采用的板載芯片LED陣列技術

詳細介紹

多激發波長調制葉綠素熒光儀——Multi-Color-PAM

主要功能

采用的板載芯片 LED 陣列技術，用 6 種不同波段的激發光作為測量光、光化光、飽和脈沖、單周轉飽和閃光與多周轉飽和閃光
具備比 PAM-2500 高 200 倍的靈敏度
化設計用于很稀的懸浮液（藻液、葉綠體懸浮液）測量
專用葉夾可用于高等植物/大型海藻等葉片狀樣品的測量
標準的 PAM 測量功能、復雜的多相熒光上升動力學擬合分析、馳豫動力學分析
特別適合狀態轉換研究、“非活性PSII”（“Inactive PS II”）研究
超快時間分辨率達到 10 ms，由此利用的 O-I1 相（O-J相）擬合分析用于分析PSII反映中心異質性分析，得出 PS II 光合單位的連接性參數（p和J），速率常數（Tau）和兩種不同類型 PS II（Type 1 和Type 2）的光學截面積（Sigma(II)_λ）等參數
新增 PSII 有效光強 PAR(II)、經過 PSII 的電子傳遞速率 ETR(II)_λ 等全新的光合參數。
專業的操作軟件，用于復雜的擬合分析

測量參數

Fo, Fm, F, Fm', Fv/Fm, Y(II), qP, qN, NPQ, Y(NO), Y(NPQ), ETR, ETR(II)_λ, p, J, Tau, Sigma(II)_λ, PAR、PAR(II) 等

應用領域

主要用于各種藻類的深入光合作用機理研究，用的波長、全新的測量、全新的參數進行藍藻、綠藻、硅藻、甲藻、紅藻、隱藻等的深入研究。如選配高等植物附件，也可實現對高等植物葉片的測量。

主要技術參數

測量光：提供 400、440、480、540、590 和 625 nm 的脈沖調制測量光，20 個強度選擇，14 個頻率選擇。

光化光：提供 440、480、540、590、625 nm 和 420-640 nm（白光）連續光化光照，光強 4000 μmol m^-2 s^-1；單周轉飽和閃光的強度 200 000 μmol m^-2 s^-1，持續時間 5-50 μs可調；多周轉飽和閃光強度 10 000 μmol m^-2 s^-1，1-800 ms可調。

遠紅光：725 nm。

信號檢測：PIN-光電二極管，帶特制鎖相放大器（設計），時間分辨率 10 μs。

Multi-Color-PAM的功能介紹

光系統 II 的相對電子傳遞速率 rETR 是很常用的一個參數。rETR = PAR × Y(II) × ETR-factor，其中 ETR-factor 是指光系統II吸收的光能占總入射 PAR 的比例。在絕大多數已發表的文獻中，均沒有試圖去測定 ETR-factor，只是簡單地假定跟 “模式葉片” 相同，即有 50% 的 PAR 分配到光系統 II，84% 的 PAR 被光合色素吸收。因此在已有的文獻中，rETR一般是用公式 rETR = PAR × Y(II) × 0.84 × 0.5 來計算的。

近期，利用多激發波長調制葉綠素熒光儀 MULTI-COLOR-PAM 可以實現光系統II的電子傳遞速率 ETR(II)_λ 的測量。首先需要利用 MULTI-COLOR-PAM 測定某個波長下的光系統II功能性光學截面積 Sigma(II)_λ（單位nm²）（其中λ為波長），然后求出光系統II的量子吸收速率 PAR(II) = Sigma(II)_λ × L × PAR = 0.6022 × Sigma(II)_λ× PAR。其中 L 為阿伏伽德羅常數，系數 0.6022 是將 1 μmol quanta m^-2 （即 6.022 × 1017 quanta m^-2）轉換為 0.6022 quanta nm^-2，PAR(II) 的單位為 quanta/(PSII × s)。接下來就可以計算 ETR(II)_λ = PAR(II) × Y(II)/Y(II)max，其中 Y(II)max 是經過暗適應達到穩態后的光系統II的量子產量，也就是 Fv/Fm×ETR(II) 的單位為 electrons/(PSII × s)。

傳統的調制葉綠素熒光儀一般只能提供一種或兩種顏色的光源，如發出白光的鹵素燈、發出藍光的藍色 LED 或發出紅光的紅色 LED 等。用不同顏色的光測量的結果可能會有不同，如圖 1A 所示，用藍光（440 nm）和紅光（625 nm）測量綠藻小球藻的快速光曲線有非常顯著的差別，藍光照射下的 rETRmax 顯著小于紅光照射下，且在較強的光曲線 rETR 有輕微下降趨勢，這說明藍光的更容易引發光抑制 (Schreiber, Klughammer et al. 2011, Schreiber, Klughammer et al. 2012)。由此可以推測，過去文獻報道的很過實驗結果，可能會存在由于采用的激發光源不同而引起的錯誤理解。

如上文所述，利用的 MULTI-COLOR-PAM，已經可以測量電子傳遞速率 ETR(II)_λ。如果用 ETR(II)_λ 來繪制快速光曲線會出現什么結果呢？圖 1B 是將圖 1A 的結果轉換成電子傳遞速率后得到的結果，可以看出無論是照射藍光還是照射紅光，其電子傳遞速率是一致的。由此證明圖 1A 中結果的差異是由于不同波長下藻細胞的光系統 II 功能性光學截面積 Sigma(II)_λ 的大小不同引起的 (Schreiber, Klughammer et al. 2011, Schreiber, Klughammer et al. 2012)。這種利用電子傳遞速率 ETR(II)_λ 繪制的快速光曲線在未來的科研中可能會發揮越來越重要的作用。


圖1 利用相對電子傳遞速率（A）和電子傳遞速率（B）分別繪制的快速光曲線（引自Schreiber et al., 2012）
利用 MULTI-COLOR-PAM 分別以藍光（440 nm）和紅光（625 nm）作為光化光源，測量小球藻（Chlorella sp.）的快速光曲線。
圖A中，rETR 的計算采用 0.42 作為 ETR factor。
圖B中，藍光和紅光激發下獲得的光系統II功能性光學截面積 Sigma(II)_λ 分別為 4.547 和 1.669 nm²，計算電子傳遞速率 ETR(II)₄₄₀ 和 ETR(II)₆₂₅ 的 Fv/Fm 分別為 0.68 和 0.66。