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當(dāng)PCR結(jié)果不甚滿意時(shí),首先檢查以下幾方面并遵照?qǐng)?zhí)行:
將PCR反應(yīng)的試管與反應(yīng)板緊貼。
當(dāng)酶反應(yīng)混合物以70℃“熱啟動(dòng)”開(kāi)始循環(huán)時(shí),切記在加入酶后稍微振蕩一下,因?yàn)樵?.2-ml的PCR管中不能均勻傳熱。
不要隨意減少dNTP的用量,它是一個(gè)系統(tǒng)的因素,必須與其它成份保持平衡。
對(duì)于有問(wèn)題的PCR反應(yīng),例如模板的量少,模板不純和環(huán)狀模板等,先嘗試加Taq酶前的體系進(jìn)行預(yù)變性,后加模板進(jìn)行正常PCR擴(kuò)增。
沒(méi)有擴(kuò)增產(chǎn)物:
在提供MgCl2緩沖液中,以0.25mmol/L為梯度增加MgCl2濃度;無(wú)MgCl2的緩沖液以0.5 mmol/L為梯度增加MgCl2濃度。
泳道中出現(xiàn)模糊條帶,如果DNA模板中存在RNA,則按上述提示濃度補(bǔ)加MgCl2,因?yàn)樵赑CR反應(yīng)中可能缺少游離的Mg2+。
檢查退火溫度和變性條件,如果有需要的話,可降低退火溫度。
檢查模板和引物的用量。
增加循環(huán)次數(shù)和/或模板DNA的用量。
泳道中出現(xiàn)模糊條帶:
減少循環(huán)次數(shù)或模板DNA的用量。
提高退火溫度,但不要超過(guò)68℃。
重新設(shè)計(jì)引物或設(shè)計(jì)更長(zhǎng)的引物。
其他值得注意的條件:
建議使用0.2-ml薄壁管。厚壁管在92℃時(shí)不能有效地使模板變性。
*反應(yīng)體積為50ml,推薦用30ml礦物油覆蓋(對(duì)蓋子加熱的PCR儀可以不加)。
大多數(shù)反應(yīng)中,0.75ml(0.5~1ml)的酶量在大多數(shù)情況下可以得到滿意的結(jié)果。
建議使用1.75mmol/L MgCl2∶350mmol/L dNTP或2.25mmol/L MgCl2∶500mmol/L dNTP組合的混合物。然而要得到*結(jié)果,優(yōu)化Mg2+的濃度是必需的。
基因組DNA模板的質(zhì)量顯著影響PCR反應(yīng)。因此推薦使用瓊脂糖凝膠電泳來(lái)檢測(cè)DNA的長(zhǎng)度。DNA片段長(zhǎng)度可以超過(guò)50kb,傳統(tǒng)的基因組DNA能擴(kuò)增片段至10kb。
要擴(kuò)增更長(zhǎng)的片段應(yīng)使用超純或高分子量的DNA。請(qǐng)查閱高分子量DNA提取操作過(guò)程相關(guān)文獻(xiàn)。
降低二級(jí)結(jié)構(gòu)和引物二聚物形成的可能性。進(jìn)行長(zhǎng)片段PCR擴(kuò)增時(shí),引物長(zhǎng)度一般為24~34個(gè)核苷酸,溶點(diǎn)在60~68℃間。使用這類引物可提高PCR反應(yīng)的退火溫度來(lái)增加反應(yīng)的特異性。這點(diǎn)非常重要,長(zhǎng)片段擴(kuò)增的效果往往受到非特異性短片段優(yōu)先擴(kuò)增的影響。
變性:*步變性在94℃下進(jìn)行2分鐘。在循環(huán)過(guò)程中盡可能縮短變性時(shí)間(94℃下進(jìn)行20--30秒),除非模板中富含GC,則95℃下變性30秒。這可以防止DNA脫嘌啉和鏈斷裂,對(duì)于所需擴(kuò)增的基因組DNA片段終長(zhǎng)度超過(guò)12 kb時(shí),應(yīng)該盡可能的降低變性溫度。
延伸:68--72℃下進(jìn)行延伸操作。
循環(huán)延伸:盡量采用循環(huán)延伸的條件,若PCR儀無(wú)此功能,則必須增加延伸的時(shí)間,例如在擴(kuò)增10kb片斷時(shí),延伸時(shí)間用10分鐘替代原來(lái)的8分鐘。
長(zhǎng)片斷PCR系統(tǒng)擴(kuò)增的片斷其3’-末端帶有一個(gè)突出的A,因此建議采用T/A克隆。若要進(jìn)行平端可隆,可用Klenow酶和T4 DNA多聚酶將PCR產(chǎn)物補(bǔ)平后再進(jìn)行。
測(cè)序時(shí)因酶的混合物帶有3’→5’外切酶活性,用Sanger方法進(jìn)行測(cè)序不能產(chǎn)生均一的(染色體)帶型。
引物設(shè)計(jì):
一般長(zhǎng)度20-30bp;
至少50%的GC含量;
避免引物二聚體和二級(jí)結(jié)構(gòu);
引物對(duì)的Tm值應(yīng)該接近。
也可下列圖示提示找到解決問(wèn)題的突破口: