(FC)含量測試盒_脂肪酸代謝系列_分光光度法
測定方法：分光光度法
產品規格：50管/48樣
注 意 ：正式測定之前選擇2-3個預期差異大的樣本做預測定。
測定意義：
FC是構成細胞膜的主要成分，也是合成腎上腺皮質激素、性激素、膽汁酸等生理活性物質的重要原料。FC濃度可作為脂代謝的指標。
測定原理：
FC氧化酶催化FC生成△4-膽甾烯酮和H2O2，過氧化物酶催化H2O2、4-氨基和酚生成紅色醌類化合物，在500nm有吸收峰，其顏色深淺與FC含量成正比。
(FC)含量測試盒_脂肪酸代謝系列_分光光度法
自備儀器和用品：
可見分光光度計、水浴鍋、可調式移液槍、1mL玻璃比色皿、異丙醇和蒸餾水。
試劑組成和配制：
試劑一：異丙醇50mL（自備）；
試劑二：液體50mL×1瓶，4℃保存；
試劑三：粉劑×1瓶，4℃保存；
試劑四：液體100μL×1瓶，4℃保存；
標準品：液體1mL×1支，濃度為0.5 μ mol/mL，4℃保存。
FC的提取：
1、組織：按照組織質量（g）：試劑一體積(mL)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1mL試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心10min，取上清置冰上待測。
2. 細菌、真菌：先收集400-500萬細胞或細菌到離心管內，棄上清，加1mL試劑一，超聲波破碎1min（強度20％，超聲2s，停1s），即FC待測液。
3．血清（漿）樣品：直接測定。
測定操作：
1. 分光光度計預熱30 min，調節波長到500 nm，蒸餾水調零。
2.FC工作液的配制：臨用前，吸取約0.8mL試劑二分別加入試劑三和試劑四瓶中，充分溶解后再全部轉移回試劑二瓶中，充分混勻，FC工作液置于37℃水浴10min。用不完的工作液4℃保存一周。
3. 標準管：依次在1mL玻璃比色皿中加入100μL FC標準液和900μL FC工作液，混勻，37℃靜置3h后于500nm測定A標準管。
4. 測定管：依次在1mL玻璃比色皿中加入100μL FC待測液和900μL FC工作液，混勻，37℃靜置3h后于500nm測定A測定管。
5、空白管：依次在1mL玻璃比色皿中加入100μL 試劑一和900μL FC工作液，混勻，37℃靜置3h后于500nm測定A測定管。
注意：
1、 標準管和空白管只需測定一次。
2、若測定管產生白色渾濁，可以將待測液用異丙醇稀釋2~5倍后測定，并在后結果乘以相應倍數。
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