糖原PAS染色試劑盒是病理學中常規(guī)的染色方法之一，顯示黏蛋白，該法常用來顯示糖原和其他多糖，該染色液不僅能夠顯示糖原，還能顯 示中性黏液性物質和某些酸性物質，以及軟骨、垂體、霉菌、真菌、色素、淀粉樣物質、基 底膜等。
   過碘酸（高碘酸）是一種強氧化劑，它能氧化糖類及有關物質中的 1，2-乙二醇基，使 之變?yōu)槎┡c Schiff 試劑能結合成一種品紅化合物，產生紫紅色。由于高碘酸還可氧 化細胞內其他物質，使用時應注意選擇好高碘酸濃度和氧化時間，使氧化控制在即能把乙二 醇基氧化成醛基，又不至于過氧化，這是很關鍵的步驟。
   本糖原PAS染色試劑盒的特點；采用森貝伽*配方技術，大大增強了染色效果； 性能穩(wěn)定，特異性強；操作簡捷，僅需 1h。
糖原PAS染色試劑盒產品組成：
編號
  SBJ0005
  SBJ0005
  SBJ0005
 STORAGE
試劑（A）: 過碘酸水溶液
 50ml
 100ml
 500ml
 4℃
試劑（B）: Schiff 試劑
 50ml
 100ml
 500ml
 4℃
試劑（C）: Lillie-Mayer *
 50ml
 100ml
 500ml
 RT
試劑（D）: 鹽酸乙醇分化液
 50ml
 100ml
 500ml
 RT
使用說明書1 份
糖原PAS染色試劑盒主要成分：
試劑（A）: 主要由 1%過碘酸組成。
試劑（B）: 主要由堿性品紅、偏重亞硫酸鈉、活性碳等組成。
試劑（C）: 主要由蘇木素、乙醇等組成。
試劑（D）: 主要由 1%鹽酸、乙醇等組成。
糖原PAS染色試劑盒自備試劑：
1、蒸餾水或去離子水
2、95%乙醇
3、無水乙醇
4、封片劑
操作步驟（僅供參考）：
1、常規(guī)固定，常采用 10%的福爾馬林，常規(guī)脫水包埋。
2、石蠟切片脫蠟入蒸餾水；冰凍切片入蒸餾水。
3、自來水沖洗 2～3min，再用蒸餾水浸洗 2 次。
4、置于試劑（A）中，室溫放置 5～8min，一般不宜超過 10min。
5、自來水沖洗 1 次，再用蒸餾水浸洗 2 次。
6、 樣本放入 森貝伽 試劑（B），置于室溫陰暗處，浸染 l0～20min。
7、 自來水沖洗 10min。
8、樣本置于試劑（C）中，染核 1～2min。
9、試劑（D）分化。
10、自來水沖洗 l0～15 分鐘后，更換雙蒸水清洗，使其返藍。
11、逐級常規(guī)乙醇脫水。
12、二甲苯透明。
13、中性樹膠封固。
糖原PAS染色試劑盒染色結果：
PAS 反應陽性物質（糖原或多糖）均呈紅色或紫紅色；細胞核呈藍色；細胞 質、肌纖維、膠原纖維等呈深淺不一的紅色；其顏色深淺取決于樣品在高碘酸和 Schiff 試 劑中作用時間的長短。
糖原PAS染色試劑盒注意事項：
1、切片脫蠟應盡量干凈。
2、過碘酸氧化時間不宜過久，氧化時的溫度以 18-22℃*，其 PH 應在 3～5 之間。
3、試劑（A）與試劑（B）應置于 4℃，密閉保存，使用時避免接觸過多的陽光和空氣，
4、試劑（A）與試劑（B）使用前，提前 30min 取出恢復到在室溫后，避光暗處使用。
5、森貝伽* Schiff 試劑在室溫過低（小于 15℃）情況下，反應緩慢，可以置于適宜溫水
（小于 30℃）中恢復后再使用。
6、鹽酸乙醇分化液應經常更換新液，其分化時間應該依據(jù)切片厚薄、組織的類別和鹽酸乙 醇分化液的新舊而定，另外分化后自來水沖洗時間應該足夠。
7、在高碘酸和 Schiff 試劑中作用時間非常重要，該依據(jù)切片厚薄、組織的類別等決定。
8、本試劑盒常用于組織切片染色，對于真菌、細胞、極其薄的切片，建議采購 森貝伽 SBJ0006 糖原 PAS 染色試劑盒（細胞真菌），因為其高碘酸溶液和蘇木素溶液濃度 更低，不宜過染。
9、冷凍切片染色時間盡量要短。
10、為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。
11、使用場所應通風，并遠離火源。
儲存條件：常溫運輸，試劑（A）、試劑（B）應置于 4℃，避光保存，回復至室溫后使用。試劑 （C） 、試劑（D），密閉，室溫保存。6 個月有效。