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大鼠羊膜胚胎細胞

參  考  價:1 - 3600 /瓶
具體成交價以合同協議為準
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    上海市

更新時間:2025-03-20 13:33:53瀏覽次數:619次

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貨號 GOY-01X1359 組織來源 胎盤組織
生長特性 貼壁 細胞形態 梭形、多角形
包裝 T25培養瓶
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本公司所有產品僅供科學實驗,不做其他科學實驗外的使用!
大鼠羊膜胚胎細胞

產品名稱

大鼠羊膜胚胎細胞

組織來源

胎盤組織

規格

5×10?Cells/T25培養瓶

包裝

T25培養瓶

貨號

GOY-01X1359

細胞形態

梭形、多角形


大鼠羊膜胚胎細胞

大鼠胚胎羊膜分離自羊膜組織;羊膜為單層上皮細胞互相連接構成的薄膜。單層上皮細胞具有分泌羊水的作用。隨著胚胎的生長發育,羊膜與絨毛密切緊貼,形成胎膜。胎膜隨著羊膜腔逐漸擴大而呈半透明的薄膜,無血管,富有韌性(胎膜也就是羊膜腔的囊壁)。羊膜腔內充滿的液體為羊水。羊膜僅覆蓋在胎盤的兒體面,并不深入胎盤組織中,隨著妊娠的進展羊膜腔逐漸擴大,占據整個子宮腔,羊膜是胎膜最內一層,是一層半透明的薄膜,與覆蓋在胎盤、臍帶的羊膜層相連接。羊膜是胎盤的最內層,與人眼結膜組織結構相似,含有眼表上皮細胞,包括結膜細胞和角膜上皮細胞生長所需要的物質,其光滑,無血管、神經及淋巴,具有一定的彈性,厚0.02~0.5mm,在電鏡下,其分為五層:上皮層、基底膜、致密層、纖維母細胞層和海綿層,羊膜基底膜和羊膜基質層含有大量不同的膠元,主要為i、iii、iv、v、vii型膠原和纖維粘連蛋白、層粘連蛋白等成份,正是這些成份使羊膜可以充當“移植的基底膜"而發揮一種新的健康合適的基質。羊膜細胞主要由羊膜上皮細胞和羊膜間充質細胞組成,均具有多分化潛能,可轉化為神經元,且還有合成、釋放生物活性物質和神經營養因子的功能。
方法簡介:

公司實驗室分離的大鼠羊膜胚胎采用yi蛋白酶-膠原酶混合消化法結合差速貼壁法,并通過上皮細胞專用培養基培養篩選制備而來,細胞總量約為5×10?cells/瓶。
質量檢測:

公司實驗室分離的大鼠羊膜胚胎經PCK免疫熒光鑒定,純度可達90%以上,且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌等。

 


大鼠羊膜胚胎細胞

大鼠羊膜胚胎細胞

包被條件 鼠尾膠原Ⅰ(2-5μg/cm2)

培養基 FBS、生長添加劑、Penicillin、Streptomycin等

換液頻率 2-3天換液一次

生長特性 貼壁

細胞形態 梭形、多角形

傳代特性 可傳3代左右

消化液 0.25%yi蛋白酶

培養條件 氣相:空氣,95%;CO2,5%

大鼠羊膜胚胎細胞

準備工作

1. 實驗器材準備:準備無菌的培養皿、培養瓶、移液管、離心管、手術器械等,并進行高壓滅菌或其他合適的消毒處理。

2. 試劑準備:配制或購買合適的培養基、消化酶(如、膠原酶等)、胎牛血清、雙抗等試劑,確保其無菌且在有效期內。

3. 實驗動物或組織來源準備:根據實驗需求,選擇合適的動物并進行相應的麻醉或處死,獲取所需組織;或從已有的組織樣本庫中獲取組織。

取材與處理

1. 取材:在無菌條件下,迅速取出目標組織,盡量減少對組織的損傷,并去除多余的脂肪、結締組織等非目的組織。

2. 清洗:將取出的組織用預冷的無菌PBS沖洗數次,以去除血液和雜質。

3. 剪切:將組織剪成約1 - 2mm3的小塊,以便后續消化。

細胞分離

1. 消化:將剪碎的組織塊放入含有適量消化酶的離心管中,在37℃恒溫搖床或培養箱中消化一段時間。期間可輕輕搖晃離心管,使消化更均勻。

2. 終止消化:當組織塊大部分被消化成單細胞懸液或小細胞團時,加入含血清的培養基終止消化。

3. 過濾與離心:用細胞篩過濾細胞懸液,去除未消化的組織碎片,然后將濾液以適當的轉速離心,收集細胞沉淀。

細胞觀察與檢測

1. 日常觀察:每天用倒置顯微鏡觀察細胞的形態、生長狀態、密度等,記錄細胞的變化情況,如發現細胞污染或異常,及時采取相應措施。
2. 細胞計數與活力檢測:在需要時,可采用臺盼藍染色等方法對細胞進行計數和活力檢測,以了解細胞的生長情況和健康狀態。

大鼠羊膜胚胎細胞

大鼠羊膜胚胎細胞

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兔腹腔主動脈內皮細胞

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普伐他汀四甲基丁胺

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亞磷氫二鈉五水合物

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枸櫞鉍雷尼替

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西替柳雜質A(水楊愈創木酚酯)

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DL-扁桃

兔肝星狀細胞

(R)-(-)-3-喹寧醇

兔睪丸支持細胞

鹽戊乙奎醚

兔骨骼肌成纖維細胞

莫米松糠酯

兔骨骼肌細胞

巴芬雜質A

兔骨髓間充質干細胞

大鼠羊膜胚胎細胞苯乙雙胍鹽鹽

兔骨細胞

氨甲苯

96孔0.66mm孔徑玻璃纖維膜過濾,未滅菌

Mizolastine


大鼠羊膜胚胎細胞

一、取材與分離

1. 快速操作

- 組織取材后需立即處理,避免長時間暴露于室溫或非營養環境。

- 使用無菌 PBS 或生理鹽水沖洗組織,去除血液、雜質。

2. 消化酶選擇

- 根據組織類型選擇消化酶,避免過度消化導致細胞損傷。

- 消化時間需嚴格控制(通常 10-30 分鐘),可通過顯微鏡觀察細胞解離狀態。

二、培養條件優化

1. 培養基選擇

- 使用含血清或特定生長因子的培養基(如 DMEM、RPMI 1640 等),部分細胞需添加胰島素、EGF 等。

- 避免頻繁更換培養基品牌或批次,減少細胞適應壓力。

2. 貼壁與傳代

- 原代細胞貼壁能力較弱,可能需要包被培養皿(如膠原蛋白、多聚賴氨酸)。

- 傳代時密度建議控制在 70%-80%,過度匯合會導致接觸抑制和分化。

三、污染控制

1. 無菌操作

- 全程在超凈臺操作,使用一次性耗材,避免交叉污染。

- 培養基中可添加雙抗,但長期使用可能影響細胞活性。

2. 支原體檢測

- 定期檢測支原體污染(如 PCR 法),污染后需及時丟棄細胞。

四、狀態監控

1. 日常觀察

- 每天檢查細胞形態、密度及培養基顏色,及時更換培養基(通常每 2-3 天換液一次)。

- 異常形態(如細胞變圓、碎片增多)可能提示污染或營養不足。

2. 傳代與凍存

- 原代細胞分裂次數有限(一般 5-10 代),需及時凍存早期代次細胞。

- 凍存液建議使用 DMSO+血清(或專用凍存培養基),梯度降溫后液氮保存。



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