1) 瘤細胞培養(無特殊要求)
骨髓瘤細胞呈懸浮或輕微附著形式生長,如附著性生長的細胞多時,用吸管輕輕吹打或輕輕叩擊培養容器即可分離下來。通常要維持細胞于指數生(細胞培養時間為15~20小時),每3~5天取細胞0.2~1ml移入到10ml新培養液中,其zui大細胞密度不能超過5×105~106/ml。一般使用含有高糖的Dmem培養液,并補加有pH的穩定劑HEPES。
2)免疫小鼠和脾細胞的制備
免疫:取6~8周齡Balb/C雌鼠,基礎免疫2周,靜脈再加強免疫一次,3~5天后用于融合。
脾細胞制備:
1.引頸處死小鼠,用酒精消毒表體。
2.無菌條件下取出脾臟,剃除結締組織和脂肪,用5ml無血清培養液沖洗一次。
3.把脾臟置于已消毒的90~100目不銹鋼網或尼龍紗網中。
4.在脾中部切開一小口,用注射器芯從一端輕輕壓擠,再用無血清培養液沖洗,令細胞通過紗網,收集入平皿中,或用注射器向脾臟內注入3 ml無血清培養液,反復抽吸數次方法獲取細胞,再制成細胞懸液亦可。
5.把細胞懸液注入50ml離心管中,加10~20ml培養液,輕輕吹打數次,室溫中置5分鐘。
6.離心(800~1000轉/分)計數,備用。
3)飼細胞的制備:常用小鼠胸腺細胞或小鼠的腹腔細胞
小鼠腹腔細胞制備方法:
1.引頸處死小鼠,用酒精消毒表體。
2.切開腹部皮膚剝向兩側,暴露出腹壁。
3.用無菌7號針頭注射器,吸取3ml無血清培養液。
4.用小鑷夾起腹壁,注入3ml無血清培養液,用手反復輕輕揉腹壁,再反復抽吸3~5次。
5.收集末次吸得的細胞,注入50ml的離心管中,再加20ml無血清培養液,用吸管漂洗一次。
6.離心,去上清,用含血清培養基調節細胞濃度為2×105/ml,接種入培養板中,24孔板每孔加0.1ml。
4)細胞融合
HAT培養基的制備