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QUANTUM量子科學儀器貿易（北京）有限公司
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荷蘭Lumicks超分辨單分子動力分析儀——C-Trap是Lumicks公司研發的單分子操控分析*設備。C-Trap 超分辨單分子動力分析儀是目前世界上將光鑷、共聚焦顯微鏡或 STED 納米顯微鏡（超級 C-Trap）和一個*的微流控系統真正緊密結合的單分子操縱儀器。C-Trap 能夠將亞皮牛頓及亞納米級別的分辨率實時同步，精準進行單分子操縱及分析。
荷蘭Lumicks C-Trap
超分辨單分子動力分析儀（熒光光鑷）
產品簡介
超分辨單分子動力分析儀（熒光光鑷）--C-Trap，是世界上將光鑷、共聚焦或STED 超分辨顯微鏡和微流控系統結合的單分子操控儀器。C-Trap通過高度聚焦激光束產生的力來操作納米/微米顆粒，實現了對生物分子的單分子操縱，并且結合力學檢測系統和共聚焦或 STED 超分辨顯微鏡，可以定位反應的結合位點，并實時監測生物分子的單分子動力學特性。C-Trap可以揭示大量分子相互作用的機制，包括：DNA的修復、DNA的復制和轉錄、核糖體的翻譯、生物分子馬達和酶、細胞膜的相互作用、DNA-DNA的相互作用、DNA發夾結構動力學、DNA/RNA的結構動力學蛋白質的折疊（去折疊）、DNA的組織化和染色質化、細胞的運動機制等信息。
Lumicks 超分辨單分子動力分析儀技術特征
| √ 多重連續激光光阱捕獲 | √ 超穩定負壓驅動微流體
| √ 多重共聚焦掃描熒光顯微鏡 √ 單光子靈敏度 √ 可升級到STED超分辨率
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技術原理
Lumicks超分辨單分子動力分析儀主要由微液流控制系統、光鑷操縱系統、力學檢測系統以及共聚焦（超分辨率顯微鏡）成像系統組成。微液流控制系統采用分通道集成設計，避免反應體系交叉污染，確保多步驟生物反應原位進行；光鑷系統通過高度聚焦激光束產生的力來操作納米或微米級的介電質顆粒，實現了對生物分子的單分子水平的操縱；結合力學檢測系統和共聚焦（超分辨率顯微鏡）成像系統，同時從力學和光學角度，高精度定位反應的結合位點，實時監測生物分子的單分子動力學特性。
應用領域
應用包括：利用 CTFM（Correlative Tweezers – Fluorescence Microscopy）揭示大量分子相互作用機制的詳細信息，主要包括：
| DNA的修復 | 中間纖維 | 核糖體的翻譯 | 細胞的運動機制 |
| DNA的復制和轉錄 | 生物分子馬達和酶 | 細胞膜的相互作用 | DNA-DNA的相互作用 |
| DNA發夾結構動力學 | DNA/RNA的結構動力學 | 蛋白質的折疊（去折疊） | DNA的組織化和染色質化 |
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| DNA-蛋白互作可視化 | 蛋白折疊/去折疊 |
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| 小分子、酶活性的研究 | 細胞骨架、分子馬達動力學的研究 |
C-Trap規格參數
| ■ 光鑷： | ■ 共聚焦顯微鏡： | |
| 檢測范圍：50μ m×50μ m×35μ m(x,y,z) 獨立光阱數目：1-4 光阱類型：持續的激光提供穩定精確的高強度捕獲 力學檢測分辨率： <0.1pN @100Hz, 2μ m 聚苯乙烯微球（由生物樣品決定） zui大逃逸力：1000pN , 4.5μm 聚苯乙烯微球 應力穩定性：＜1pN 光阱轉角頻率：0.1kHz-15kHz光阱距離分辨率：<0.3nm @100Hz 小步移： <0.5nm 光阱移動特性：所有光阱可在 x,y 平面獨立移動；1+2，3+4 可在三維空間成對移動 運動微球追蹤精確度：<3nm @ 100Hz 視頻分析
| 可視范圍：50μm×35μm（x,y） 共聚焦顏色*：多可三色共用，從 488nm 到 647nm 之間的十種波長中選擇 共聚焦分辨率： 衍射極限之內 STED 分辨率*：<35nm 掃描速度：線性掃描速度 200Hz 定位精度：<15nm 光斑定位精確度：<1nm 背景抑制極限：100nM @1ms 積分時間 敏感度：極低的亮度檢測極限以及單光子計數。可檢測單個 eGFP 其他值得注意的特點：和光鑷*的結合，交互式體驗 | |
| ■ u-Flux 微流控： | ■ 軟件： | |
| 微流控流動系統：負壓系統可以在層流環境下檢測到亞納米級別的位移 用于遠程操控的自動閥 無位移偏差 單分子測量零干擾 多達11個注射器可以接到流動池上來實現復雜的多重蛋白分析 | C-Trap便捷直觀的雙屏顯示界面給您的實驗操作帶來*便利；您可通過手動點擊操縱桿或通過簡單的命令來自動控制諸如光阱位置，平臺位置，微流體以及數據記錄等過程。以用戶為中心的軟件操作界面以及簡易的操作流程使復雜的單分子實驗過程（微球捕獲，分子的連接，隨后的操縱以及成像整個過程）在數分鐘之內即可完成。 |
文獻列表
1.Brouwer et al. Sliding Sleeves of XRCC4-XLF Bridge DNA and Connect Fragments of Broken DNA. Nature. 2016. Vol 535.
2.Candelli et al. Visualization and quantification of nascent RAD51 filament formation at single-monomer resolution. PNAS. 2014
3.Heller et al. STED nanoscopy combined with optical tweezers reveals protein dynamics on densely covered DNA. Nature. 2013.
4.Kurniawan et al. Fibrin Networks Support Recurring Mechanical Loads by Adapting their Structure across Multiple Scales. Biophysical Journal. 2016.
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