| 50112檢測高效相色譜儀 1 簡介 本文參照GB/T 17819-1999標準采用了501系列高效液相色譜法測定維生素預混料中12的方法。501高效液相色譜儀適用于維生素預混料、12預混制劑中12的測定。檢測范圍為每千克樣品中12含量大于0.25mg, 2 方法原理 試樣中12用水提取，經高效液相色譜反相柱分離，其峰面積與12的含量成正比 3 試劑和材料 本標準所用試劑除特殊注明外，均為優級純，水為去離子水。 3.1 乙睛:色譜純。 3.2 正磷酸溶液 3.3 25%乙醇溶液 3.4 12標準溶液。 3.4.1 12標準貯備溶液:準確稱取0.1000g12純品(符合USP),溶解于100Ml乙醇溶液(3.3)中，并稀釋定容至刻度，搖勻。該標準貯備液每毫升含12 1mg. 3.4.2 12標準工作液:準確吸取12標準貯備液(3.4.1)1mL于50Ml容量瓶中，用移動相稀釋定容刻度，搖勻。該標準工作液1Ml含12 2ug 4 儀器、設備 4.1 實驗室常用設備。 4.2 超聲波水浴。 4.3 高效液相色譜儀:進口手動進樣器（自動進樣器）,501高效液相色譜儀、紫外可調波長檢驗器 4.4 超純水裝置 4.5 離心機:3000r/min. 5 試樣制備 取具有代表性樣品至少500g，用四分法縮分至100g， 粉碎，全部過0.28mm 孔篩混勻，裝入樣品瓶內密閉，避光低溫保存備用。 6 分析步驟 6.1 提取 6.1.1 維生素預混料中12的提取 稱取試樣 2-3g (精確至士0.0001g )，置于100mL棕色容量瓶中，加約60mL去離子水，在超聲波水浴中超聲提取15min，取出，用去離子水定容至刻度，混勻，過濾，濾液過0.45um濾膜，供高效液相色譜儀分析。 6.1.2 12制劑(1%-2%)的提取 稱取試樣1g(精確至±0.0001g)于100mL棕色容量瓶中，加人約60mL去離子水，在超聲波水 浴中超聲提取10min，取出用去離子水定容過濾。精確吸取1.00mL溶液于50mL棕色容量瓶中，用去離子水定容至刻度，該液通過0.45um濾膜過濾，供高效液相色譜儀分析 6.2 測定步驟 6.2.1 色譜條件 柱子 :u-Bondpak NH2,粒度5um,3.9mm×300mm。Vertex NH2色譜柱，5um，4.6×250mm 柱溫 :30℃。 流動相 : 3%正磷酸水溶液260mL與700mL乙膀混合，超聲脫氣。 流速 : 1.7mL/min, 檢測波長 :361nm。 6.2.2 定量測定 按高效液相色譜儀說明書調整儀器操作參數，用兩次以上相應標準工作液，對系統進行校正。 將通過0.45um濾膜的樣液(6.1.1)依次分裝于自動進樣小瓶中，依外標法上液相色譜儀測定 6.2.3 也可采用反相離子對高效液相色譜測定12的方法(見附錄A) 7 測定結果的計算 測定結果按式(1)計算w1=Pi×V×pi×Vst/Pn×m×Vi 式中w1一每千克樣品中12的含量，mg; m- 試樣質量，g; Vi-試樣溶液進樣體積,uL; Pi-試樣溶液峰面積值; V-試樣稀釋的體積，mL; Pi-標準溶液濃度，ug/mL; Vst-標準溶液進樣體積,uL; Pn-標準溶液峰面積平均值。 每個試樣取兩份試料進行平行測定，以其算術平均值為測定結果。結果表示到每千克樣品中12 O.01mg 8 允許差 同一分析者對同一試樣同時兩次平行測定結果的相對偏差應不大于15% 反相離子對高效液相色譜測定預混料中維生案B12 A1 原理 試樣中12經水提取后，注人反相色譜柱上，由于輸入了有機的反相離子對四丁基磷酸銨(PIC A)和己烷磺酸鈉(PIC-B6)溶掖，12的陽離子與移動相中陰離子形成離子偶化合物，在移動過程中與固定相分開達到分離. A2 試劑和材料 1 甲醇(優級純)。2 磷酸。 3 四丁基磷酸銨(PIC A),4 己烷磺酸鈉(PIC-B6), A3 測定色譜條件 柱子 :150 m×4.0mm(內徑)不銹鋼柱。VertexC18色譜柱，250mm×4.6，5um進口 固定相 :u-Bondpak C18(ODS)粒度5um, 移動相 :甲醇-水(250+750)約980mL，加入PICA/PICB6(各一小瓶)20mL，用上述25%甲醇水定 容至1L,混勻，用磷酸調節pH3,流速 :1ml/min, 柱溫 :室溫 檢測器 :紫外檢測器，使用波長365nm, 進樣量 : 20uL,保留時間 :約7.0min 關鍵詞：12液相色譜儀，飼料檢測高效液相色譜儀，維生素預混料中12測定高效相色譜法，國產液相色譜儀，12高效液相色譜法。 | 
