細胞凋亡檢測試劑盒（Annexin V-Alexa Fluor 647/PI）

   貨號                 規格

 BDLS4002-20     20T

 BDLS4002-50      50T

 BDLS4002-100    100T 

檢測方法：采用 Annexin V 與 PI 雙染的方法

 儲存條件：2-8℃避光保存（勿冰凍） 

    細胞凋亡檢測試劑盒介紹：

      細胞凋亡早期改變發生在細胞膜表面，這些細胞膜表面的改變之一是磷脂酰(PS) 從細胞膜內轉移到細胞膜外，使 PS 暴露在細胞膜外表面。PS 是一種帶負電荷的磷脂，正常 主要存在于細胞膜的內面，在細胞發生凋亡時細胞膜上的這種磷脂分布的不對稱性被破壞而使 PS 暴露在細胞膜外。

   Annexin V 具有易于結合到磷脂類如 PS 的特性，對 PS 有高度的親和性。因此，該蛋白可充當一敏感的探針檢測暴露在細胞膜表面的 PS。PS 轉移到細胞膜外不是凋亡所的，也可發生在細胞壞死中。兩種細胞死亡方式間的差別是在凋亡的初始階段細胞膜是完好的，而細胞壞死在其早期階段細胞膜的完整性就破壞了。因此，可以采用 Annexin V 與 PI 雙染的方法，通過流式檢測細胞早期凋亡。 

注意事項：

本試劑盒需使用流式細胞儀進行檢測。此產品僅供研究，不用于臨床

試劑盒組份 

1. 結合緩沖液 4× (Binding Buffer 4×) 體積：20 Tests: 4ml（4 倍濃縮液） 50 Tests: 10ml（4 倍濃縮液） 100 Tests: 20ml（4 倍濃縮液） 

稀釋后溶液中各組分濃度：10mM Hepes/NaOH, pH 7.4, 140mM NaCl, 2.5mM CaCl2 2. 碘化丙錠溶液 （Propidium Iodide, PI） 

體積： 20 Tests: 0.2ml； 50 Tests: 0.5ml ；100 Tests: 1.0ml 

濃度： 20μg/ml 

3. 重組人 Annexin V/Alexa Fluor 647 , (rh Annexin V/Alexa Fluor 647 ）

來 源：大腸桿菌（E.coli） 分 子 量：35.8 KDa 

樣 品 量：

20 Tests: 0.1ml，可用于 20 次實驗 

 50 Tests: 0.25ml，可用于 50 次實驗

 100 Tests: 0.5ml，可用于 100 次實驗 

保存方法：于 50mM Tris, 100mM NaCl, 1%BSA, 0.02%NaN3,pH7.4 溶液中保存 

純 度：SDS-PAGE 及反相 HPLC 表明純度大于 98% 

生物活性：Annexin V 可結合于磷酯酰并表現出抗磷酯酶活性 

實驗操作步驟

 1. 細胞樣品的準備：

 a)對于貼壁細胞：小心收集細胞培養液到一離心管內備用。用不含 EDTA 的消化細胞， 至細胞可以被輕輕用移液管或槍頭吹打下來時，加入前面收集的細胞培養液，吹打下所有的 貼壁細胞，并輕輕吹散細胞。再次收集到離心管內。 

1000rpm 左右離心 5min，沉淀細胞。 對于特定的細胞，如果細胞無法離心至離心管底，可以適當延長離心時間或稍稍加大離 心力。小心吸除上清，可以殘留約 50µl 左右的培養液，以避免吸走細胞。

加入約 1ml 4℃預 冷的 PBS，重懸細胞，再次離心沉淀細胞，小心吸除上清。 

b)對于懸浮細胞：1000rpm 左右離心 5min，沉淀細胞。對于特定的細胞，如果細胞無法 離心至離心管底，可以適當延長離心時間或稍稍加大離心力。小心吸除上清，可以殘留約 50µl 左右的培養液，以避免吸走細胞。加入約 1ml 4℃ 預冷的 PBS，重懸細胞，再次離心 沉淀細胞，小心吸除上清。

 2. 用去離子水按 1:3 稀釋結合緩沖液（4ml 4x 結合緩沖液+12ml 去離子水）；

 3. 用 1x 結合緩沖液重新懸浮細胞，調節其濃度為 1-5x106 /ml；

 4. 取 100μl 的細胞懸液于 5ml 流式管中，加入 5μl Annexin V/Alexa Fluor 647 和 10μl 20μg/ml 的碘化丙錠溶液；混勻后于室溫避光孵育 5 分鐘； 

5. 加入 10ul 20ug/ml 的碘化丙錠溶液（PI）,并加 400μl PBS，立刻流式檢測。 

實驗設計：

 1)未轉染細胞 空白管：陰性對照組細胞，不加 Annexin V/Alexa Fluor 647 ，碘化丙錠溶液(PI)。用于調節電壓。 

檢測管：處理的細胞，加 Annexin V/Alexa Fluor 647 ，碘化丙錠溶液(PI)。

用空白管和單陽 管調節好電壓補償后，獲得所需要的流式數據。

 注：無需用單染管 Annexin V/Alexa Fluor 647 調補償。 

2) 轉染 GFP 細胞 未轉染空白管：未轉染細胞，不加 Annexin V/Alexa Fluor 647，碘化丙錠溶液(PI)。

用于調節 電壓 轉染 GFP 空白管：轉染 GFP 對照組細胞，不加轉染 Annexin V/Alexa Fluor 647，碘化丙錠 溶液(PI)。

用于調節補償 檢測管：處理的細胞，加 Annexin V/Alexa Fluor 647，碘化丙錠溶液(PI)。調節好電壓補償 后，獲得所需要的流式數據。

 常見問題：

 1、 Annexin V/ PI 凋亡檢測的試劑盒能否檢測人以外其他動物的細胞凋亡情況？

 可以。因為 Annexin V 是與磷脂酰(PS)親和，而 PS 在不同種屬間沒差異。在正常細胞中，PS 只 3 / 3 分布在細胞膜脂質雙層的內側，而在細胞凋亡早期，PS 由脂膜內側翻向外側。

 2、 貼壁細胞做凋亡用消化下來對細胞膜損傷？

 低濃度消化，輕柔吹打貼壁細胞 2～3 次，離心機 4℃1000rpm 5min 離心，處理得當的話，造成 損傷可以控制在 5%以內，有對照組的情況下對實驗結果不會造成明顯影響。

 3、 貼壁細胞可以先染 PI 然后再消化下來嗎？

這樣是否可以減小由于消化液造成的細胞 膜破損而染上的 PI 的誤差？ 

先加 PI 不僅染色是否每組都均勻充分很難判斷，而且 PI 本身對細胞也是有毒性的，對實驗結果影響會 比大，不建議這樣做。

 4、 為什么只能用不含 EDTA 的消化貼壁細胞，用含 EDTA 的消化細胞對結果有 什么影響？

 因為 Annexin V 是 Ca 依賴的蛋白，所以不能加入 EDTA，防止 EDTA 螯合了 Ca 離子從而影響 Annexin V，進而影響結果。 

5、 有些廠家說明書 Annexin V 和 PI 一起加？為什么你們先加 Annexin V 后加 PI？ 

用流式檢測凋亡時，PI 受時間的影響很大，因標記了 PI 后會加大細胞毒性，隨著時間延長會導致 PI 的 染色增加，特別是檢測早期凋亡時，如果時間延長除了會導致在流式細胞儀上的細胞分群差距加大外，誤 差會明顯加大。一般 PI 加上后立刻上機，然后在一個小時內檢測完成。兩種方法都可以，但是按照我們 操作步驟造成的誤差會更小。

 6、 你們哪種凋亡檢測試劑盒能用于轉染 GFP 細胞的凋亡檢測？

 BDLS4004 Annexin V-PE/7-AAD Apoptosis Detection Kit 凋亡檢測試劑盒 BDLS4002 Annexin V-Alexa Fluor 647/PI Kit

細胞凋亡檢測試劑盒 凋亡檢測試劑盒 實驗參考圖片 Jurkat 細胞用誘導凋亡后用 Annexin V-Alexa Fluor 647/PI 雙染流式分析圖譜