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天根試劑盒- 多糖多酚植物miRNA提取試劑盒-DP504

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更新時間:2023-03-16 12:37:48瀏覽次數:591次

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天根miRcute多糖多酚植物miRNA提取分離試劑盒 DP504可從植物組織,特別是富含多糖多酚或淀粉的植物組織(如棉花葉片,馬鈴薯塊莖,蘋果,桃樹葉片等)中快速提取包含miRNA的總RNA,可同時處理大量不同樣品。提取的總RNA純度高,沒有蛋白和其它雜質的污染。

天根miRcute多糖多酚植物miRNA提取分離試劑盒 DP504

DP504

產品簡介

多糖多酚植物miRNA提取分離試劑盒可從植物組織,特別是富含多糖多酚或淀粉的植物組織(如棉花葉片,馬鈴薯塊莖,蘋果,桃樹葉片等)中快速提取包含miRNA的總RNA,可同時處理大量不同樣品。提取的總RNA純度高,沒有蛋白和其它雜質的污染。

產品特點
裂解液特別優化,并配有助沉劑,專為多糖多酚植物樣 本的裂解設計,得率高。
柱法純化,擺脫雜質污染,純度更高,適合下游定量檢測。 
功能全面,除了小片段的提取,還能進行總 RNA 的提取。
1 h內即可提取完畢,提高提取效率。

下游應用
可用于RT-PCR、Real Time RT-PCR、芯片分析、Northern Blot、Dot Blot、PolyA 篩選、體外翻譯、RNase保護分析和分子克隆等多種下游實驗。

操作步驟:

 使用前在漂洗液RWA和去蛋白液MRD中加入C?H?O,加入量請參見瓶上標 簽。 

一、miRNA富集部分的提取 對miRNA的純度要求較高時,比如miRNA芯片研究、miRNA克隆建議采用此方法。 

1.勻漿處理 50 mg植物葉片或果實果肉在液氮中迅速研磨成粉末,轉入到1.5 ml離心管中,加入500 μl裂解液SLM,顛倒混勻以保證裂解液浸沒所 有樣本,再加入1/10裂解液體積的助沉劑PLA,立即渦旋震蕩混勻。

 注意 1:對于預期RNA得率小于10 μg的植物樣本,請使用100 mg的起始樣本量;對于富 含淀粉的樣本或成熟葉片,請將裂解液SLM用量增加至700 μl。 

注意 2:由于植物多樣性非常豐富,而且同種植物的不同生長發育階段和不同組織RNA含 量都不相同,請根據具體實驗情況選擇合適的樣本量。 

2.室溫,12,000 rpm(~13,400×g) 離心5 min。

 3.將上清液轉移至過濾柱CS上(過濾柱CS放在收集管中),室溫12,000 rpm(~13,400×g) 離 心2 min,小心吸取收集管中的上清至新的RNase-Free的離心管中,吸頭盡量避免接觸收 集管中的細胞碎片沉淀。 

4. 量取轉移液的體積,緩慢加入轉移液體積0.43倍的C?H?O, 混勻(此時可能會出現沉淀)。將得到的溶液和沉淀一起轉入吸附柱 miRspin中,室溫 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec。若一次不能全部加入到吸附柱 miRspin中,請分兩次轉入,離心后棄掉吸附柱miRspin,保留流出液。

 5. 量取流出液的體積,緩慢加入流出液體積0.75倍的C?H?O,混勻(此時可能會出現沉淀)。將得到的溶液和沉淀一起轉入吸附柱CR4 中,室溫 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,若一次不能全部加入到吸附柱CR4中, 請分兩次轉入,離心后棄掉流出液,保留吸附柱CR4。

6. 向吸附柱CR4中加入700 μl去蛋白液MRD,室溫靜置2 min,室溫 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,棄廢液。

 7. 向吸附柱CR4中加入500 μl漂洗液RWA(請先檢查是否已加入乙醇),室溫靜置2 min, 室溫 12,000 rpm (~13,400×g)離心30 sec,棄廢液。

 8. 重復操作步驟7。 

9. 將吸附柱CR4放入2 ml收集管中,室溫 12,000 rpm (~13,400×g)離心2 min,去除殘余液 體。

 注意:此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除,離心后將吸附柱CR4在室溫放置2 min,或置于超凈工作臺上通風片刻,以充分晾干。如果有漂洗液殘留,可能會影響后續 的RT等實驗操作。

10. 將吸附柱CR4轉入一個新的RNase-Free 1.5 ml離心管中,加50 μl RNase-Free ddH2O, 室溫放置2 min,室溫 12,000 rpm (~13,400×g)離心2 min。

 注意:洗脫緩沖液體積不應少于30 μl,體積過小影響回收效率。且RNA應保存在-70℃, 以防降解。

注意:如果想提高RNA得率,可重復上步操作一次。

二、 Total RNA的提取 提取的total RNA中含有miRNA等small RNA。

對miRNA的純度要求不高時,比如在研 究miRNA RT-PCR、miRNA Northern blot時也可以采用此方法。

1. 勻漿處理 50 mg植物葉片或果實果肉在液氮中迅速研磨成粉末,轉入到1.5 ml離心管中,加入500 μl裂解液SLM ,顛倒混勻以保證裂解液浸沒所有 樣本,再加入1/10裂解液體積的助沉劑PLA ,立即渦旋震蕩混勻。

 注意1:對于預期RNA得率小于10 μg的植物樣本,請使用100 mg的起始樣本量;對于富 含淀粉的樣本或成熟葉片,請將裂解液SLM用量增加至700 μl。

 注意2:由于植物多樣性非常豐富,而且同種植物的不同生長發育階段和不同組織的RNA 含量都不相同,請根據具體實驗情況選擇合適的樣本量。

 2. 室溫,12,000 rpm(~13,400×g) 離心5 min。

 3. 將上清液轉移至過濾柱CS上(過濾柱CS放在收集管中),12,000 rpm(~13,400×g) 離心2 min,小心吸取收集管中的上清至新的RNase-Free的離心管中,吸頭盡量避免接觸收集 管中的細胞碎片沉淀。

 4.緩慢加入1.5倍上清體積的C?H?O,混勻(此時可能會出現沉淀),將得到的溶液和 沉淀一起轉入吸附柱CR4中, 12,000 rpm(~13,400×g)離心30 sec,倒掉收集管中的廢 液,將吸附柱CR4放回收集管中。

若一次不能全部轉入吸附柱CR4 ,請分兩步進行。 注意:如果上清液體積有損失,請相應調整無水乙醇的加量。 

5.向吸附柱CR4中加入700 μl去蛋白液MRD(使用前請檢查是否已加入乙醇),12,000 rpm(~13,400×g)離心30 sec,倒掉收集管中的廢液,將吸附柱CR4放回收集管中。

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