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| 參考價 | ￥1100 |
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型號
-
品牌
其他品牌 -
廠商性質
經銷商 -
所在地
上海市
| 96T | 1100元 | 1 盒 可售 |
更新時間：2024-05-21 13:51:15瀏覽次數：333
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外切-β-1,4-葡聚糖酶(CBH)試劑盒,微板法
外切-β-1,4-葡聚糖酶(CBH)試劑盒,微板法
本試劑盒僅供科研使用 1 外切-β-1,4-葡聚糖酶/纖維二糖水解酶（CBH）試劑盒說明書 （貨號：WS4350W 微板法 96 樣） 一、產品簡介： 外切-β-1,4-葡聚糖酶又稱纖維二糖水解酶（CBH）（EC 3.2.1.91）存在于細菌、真菌和 動物體內，是纖維素酶系的組份之一，該酶作用于β-1,4-糖苷鍵，每次切下一個纖維二糖（還 原糖）分子，在堿性條件下，產生的還原糖能與3,5-二硝基水楊酸反應生成棕紅色物質， 該物質在540nm下有吸收峰，即可得出外切-β-1,4-葡聚糖酶的酶活性大小。 二、試劑盒組分與配制： 試劑名稱 規格 保存要求 備注 提取液 液體 110mL×1 瓶 4℃保存 試劑一 液體 32mL×1 瓶 4℃保存 試劑二 粉劑×1 瓶 4℃保存 臨用前加 16mL 試劑一，充分混勻 呈分散狀態，每次用前務必混勻。 試劑三 液體 30mL×1 瓶 4℃保存 標準品 粉體 mg×1 支 4℃保存 若重新做標曲，則用到該試劑 三、所需的儀器和用品： 酶標儀、96 孔板、水浴鍋、離心機、可調式移液器、研缽、冰和蒸餾水。 四、外切-β-1,4-葡聚糖酶活性測定： 建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定，了解本批樣品情況，熟悉實驗流程，避免實 驗樣本和試劑浪費！ 1、樣本制備： ① 組織：稱取約 0.2g 組織（水分充足的樣本可取 1g），加入 1mL 經預冷的 95%乙醇冰 浴勻漿，4℃放置 10min；12000rpm，4℃離心 5min；棄上清，留沉淀，向沉淀中加入 經預冷的 80%乙醇混勻，4℃放置 10min；12000rpm，4℃離心 5min；棄上清，留沉淀。 再向沉淀中加入 1mL 經預冷提取液，渦旋混勻，4℃放置 10min；12000rpm，4℃離心 10min；留上清，棄沉淀。上清液置冰上待測。 ② 細菌/培養細胞：先收集細菌或細胞到離心管內，離心后棄上清；取約 500 萬細菌或細 胞加入 1mL 提取液，超聲波破碎細菌或細胞（冰浴，功率 20％或 200W，超聲 3s，間 隔 10s，重復 30 次）；12000rpm，4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。 【注】：若增加樣本量，可按照細菌或細胞數量（104個）：提取液體積（mL）為 500：1 比例進行提取。 ③ 液體樣本：若是澄清液體，直接檢測，若液體樣本渾濁，需 4℃×12000rpm，離心 10min， 取上清液檢測。 2、上機檢測： ① 酶標儀預熱 30min 以上，調節波長至 540nm。 ② 所有試劑解凍至室溫（25℃），試劑二使用前務必混勻。 ③ 在 EP 管中依次加入： 試劑名稱（μL） 測定管 對照管 樣本 50 50 試劑一 150 試劑二 150 37℃孵育 60min 試劑三 150 150 混勻，95℃水浴 5min，取出后用自來水或冰水冷卻至室溫，本試劑盒僅供科研使用 2 取 200μL 澄清液體于 96 孔板中，在 540nm 處讀取吸光值 A，ΔA=A 測定管-A 對照管（每個樣本做一個對照管）。 【注】若ΔA 在零附近，可增加樣本取樣質量 W 或增加樣本加樣體積 V1（如增至 80μL， 則試劑三相應減少），則改變后的 W 和 V1 需代入計算公式重新計算。 五、結果計算： 1、標準曲線方程為 y = 0.0132x - 0.0545；x 為標準品質量（μg），y 為ΔA。 2、按照蛋白濃度計算 單位定義：每毫克組織蛋白每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg/h/mg prot)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷(Cpr×V1) ÷T =1515.2×(ΔA+0.0545) ÷Cpr 3、按樣本鮮重計算 單位定義：每克組織每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg/h/g 鮮重)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷(W×V1÷V) ÷T =1515.2×(ΔA+0.0545)÷W 4、按細菌/細胞密度計算 單位定義：每 1 萬個細菌或細胞每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg /h/104 cell)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷(500×V1÷V) ÷T =3×(ΔA+0.0545) 5、按液體體積計算 單位定義：每毫升液體每小時催化產生 1μg 還原糖定義為一個酶活力單位。 外切-β-1,4-葡聚糖酶活力(μg /min /mL)=[(ΔA+0.0545)÷0.0132]÷V1 ÷T =1515.2×(ΔA+0.0545) V---加入提取液體積，1 mL； V1---加入樣本體積，0.05 mL； T---反應時間，60 min=1 小時； W---樣本質量，g； 500---細菌或細胞總數，500 萬； Cpr---樣本蛋白質濃度，mg/mL；建議使用本公司的 BCA 蛋白含量檢測試劑盒； 附：標準曲線制作過程： 1 制備標準品母液（2mg/mL）：從標準品管中稱量取出 4mg 至一新 EP 管中，再加 2mL 蒸餾水混勻溶解即 2mg/mL 的葡萄糖（母液需在兩天內用且-20℃保存）。 2 把母液用蒸餾水稀釋成六個濃度梯度的標準品：0, 0.4, 0.8, 1.2, 1.6, 2. mg/mL。也可 根據實際樣本來調整標準品濃度。 3 依據對照管的加樣表操作，根據結果即可制作標準曲線。
