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用戶指南
Amicon® Ultra-4 超濾離心管
適用于體積不超過4 mL的樣本

僅供研究使用；不適用于診斷程序
默克生命科學部
內容提要
產品簡介............................................................................................................................................................ 3
操作步驟..................................................................................................................................................... 4-5
常見結果數據參考...................................................................................................................................... 6-8
zui大化樣本回收率與量化回收.................................................................................................................. 8-9
產品規格.......................................................................................................................................................... 9
化學相容性....................................................................................................................................................10
訂購信息........................................................................................................................................................11
附：常見問題與解答............................................................................................................................... 12-13
常用超濾產品列表.....................................................................................................................................14
新產品介紹：純化超濾管，攪拌式超濾杯..................................................................................................15
簡介
應用
所提供的材料
Amicon® Ultra-4超濾離心管具有快速超濾功能，能夠達到較高的濃縮倍數，輕松實現從稀釋和復雜
的混和樣本中濃縮回收目的產物。垂直設計的超濾膜以及較大的有效濾膜表面積有助于快速的樣本
處理，獲得較高的樣本回收率（通常>90%），并達到80倍的濃縮。根據標稱分子量限值（NMWL）的不
同，典型處理時間為10-40分鐘。超濾膜的垂直設計也zui大程度降低了溶質極化造成的濾膜結垢；死
體積設計能有效防止過度離心使樣本干掉而造成樣本損失。Amicon® Ultra-4超濾管未經消毒，僅供
一次使用。
Amicon® Ultra-4產品系列包括5種不同的截留分子量（MWCO,或標稱分子量限值NMWL）。這些超
濾管僅供研究使用，不適用于診斷程序。
Amicon® Ultra-4超濾管提供了一個蓋子，一個超濾內管和一個離心外管。
濃縮含有抗原、抗體、酶、核酸（DNA/RNA樣本，單鏈或雙鏈）、噬菌體等微生物樣本，外泌體
（exosome），微粒（如微珠、納米材料）等
純化組織培養提取液或細胞裂解液中的大分子成分，去除反應液中的引物、接頭或分子標記，在
HPLC前去除蛋白質
除鹽，緩沖液更換，或滲濾
Amicon® Ultra 3K 超濾管 — 3,000 NMWL
Amicon® Ultra 10K 超濾管 — 10,000 NMWL
Amicon® Ultra 30K 超濾管 — 30,000 NMWL
Amicon® Ultra 50K 超濾管 — 50,000 NMWL
Amicon® Ultra 100K 超濾管 — 100,000 NMWL
3
超濾內管
濾出液收集管（離心外管）
蓋子
1. 向Amicon® Ultra超濾離心管加入不超過4 mL的樣本（如果使用23°定角轉子，則為3.5mL）。
2. 將蓋好蓋子的超濾離心管放入離心轉子（為擺桶轉子）中，用一個類似的超濾管平衡。
3. 如果使用擺桶轉子，以zui大4,000 x g離心約10–40分鐘。如果使用定角轉子，使超濾內管的膜面朝
上，對于Amicon® Ultra 3K、10K、30K和50K的超濾管以zui大7,500xg離心約10–40分鐘；對于
Amicon® Ultra 100K的超濾管以zui大5,000 x g離心約10–20分鐘。
說明：關于典型的離心時間，請參考圖1和圖2以及表2和表3
4. 回收濃縮產物時將移液管（槍頭）插入超濾離心管內管，左右移動著吸取樣本，以確保*
回收。濾過液可以保存在離心外管中。
說明： 要想達到理想回收率，離心后請立即取走濃縮后樣本。
脫鹽或滲濾（Diafiltration）
脫鹽、更換緩沖液或滲濾是從含有生物分子的溶液中去除鹽分或溶劑的重要方法。鹽分去除或緩沖液更
換可通過Amicon® Ultra-4超濾管來完成，具體過程是濃縮樣本，棄去濾出液，然后向濃縮液中加入任何
所需的溶劑，恢復到樣本原先的體積。“洗出”的過程可反復進行，直到雜質濃度被充分降低。請參看下面
的例子。
Amicon® Ultra-4超濾管的超濾膜含有痕量甘油。如果擔心干擾后續分析，可用緩沖液或Milli-Q® 水
進行預清洗。如果干擾仍然存在，可用0.1 N NaOH清洗，再用緩沖液或Milli-Q® 水清洗并甩干。
注意：Amicon® Ultra超濾離心管中的濾膜一旦潤濕后應避免變干。如果在預清洗后不是立即使
用，則讓液體保留在濾膜上，直到使用。
帶有能容納17mmx124mm 15ml錐底試管的擺桶或定角轉子的離心機，選擺桶轉子
注意：為了避免離心過程中設備的損壞，在離心之前請清理、檢查設備。
200μL槍頭（尖頭）用于回收濃縮液
配套設備與用品
適用性評估
在嘗試一個新的應用或建立新操作流程時，建議進行初步的回收和截留實驗。請參看“如何量化回收”
部分。
超濾管的儲存
（15-30℃）室溫存放。
預清洗
如何使用Amicon® Ultra-4超濾離心管
4
5
性能-蛋白濃度
影響流速的因素包括樣本的濃度、起始體積、溶質的化學性質、相對離心力、離心轉子的角度、濾膜類型以
及溫度。圖1、圖2及表2、表3可用來估計各種大小的蛋白質達到特定的濃縮液體積或濃度所需的時間。
4mL樣本離心時間一般約需10至40分鐘（取決于超濾管的截留分子量）。盡管大部分樣本在離心開始后的
前15至30分鐘過濾，但一般在離心20至40分鐘后才能達到zui低濃縮液體積（30–75μL）。
流速
圖1. 典型的濾出液體積與離心時間（擺桶轉子）
離心條件：4,000 × g，室溫，4mL起始體積。
操作樣品：3K和5K超濾管用的樣品是細胞色素c、30K和50K超濾管用的樣品是BSA，100K超濾管用
的 樣品是IgG。n=6。
旋轉濃縮旋轉濃縮
4 mL 1 mg/mL
蛋白質100 mM
NaCl溶液
50 μL 80 mg/mL
蛋白質100 mM
NaCl溶液
100 mM
NaCl
50 μL 80 mg/mL
蛋白質11.1 mM
NaCl溶液
11.1 mM
NaCl
加入3.95 mL
10 mM NaCl或
更換緩沖液
4 mL 1 mg/mL
蛋白質11.1 mM
NaCl溶液
濾出液體積（mL）
0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
3.5
4.0
0 5 10 15 20 25 30 35 40
3K
10K
30K
50K
100K
旋轉時間（分鐘）
性能-DNA濃縮
Merck Millipore Ltd.已經確定，Amicon® Ultra-4 30K 裝置對范圍從137至1,159的堿基對雙株DNA
提供回收率與旋轉時間之間的*平衡。
表1. Amicon® Ultra-4 30K裝置的核苷酸典型回收率
雙株DNA堿基對大小 旋轉時間（分鐘） 濃縮液體積（μL） 回收率（%）
137-1,159 10 50-70 ＞85
旋轉條件：定角轉子，5,000xg,室溫，2mL起始體積。
圖2. 典型的濾出液體積與離心時間（定角轉子）
離心條件：Amicon® Ultra 3K、10K、30K和50K的超濾管7,500 x g；Amicon® Ultra100K的超濾管
5,000 x g。
操作樣品：3K和5K超濾管用的樣品是細胞色素c、30K和50K超濾管用的樣品是BSA，100K超濾管用
的 樣品是IgG。n=6。
表2. 典型的濃縮液體積與離心時間（擺桶轉子）
離心條件：4,000 × g，室溫，4 mL起始體積。
所使用的蛋白質分子量標準：3K和10K為細胞色素c，30K和50K為BSA，100K為IgG，n=6（3批濾膜
的平均值）。 帶灰色背景的體積數值將被用來計算表5中的蛋白回收率。
6
旋轉時間（分鐘）
濾出液體積（mL）
0.0
0.5
1.0
1.5
2.0
2.5
3.0
3.5
4.0
0 5 10 15 20 25 30 35 40
3K
10K
30K
50K
100K
離心時間
（分鐘）
10 1,369 176 73 32 264
15 – 76 46 – 36
20 478 58 37 30 33
25 228 – – – –
30 159 – – – –
40 94 – – – –
3K超濾管10K超濾管30K超濾管50K超濾管100K超濾管
濃縮液體積(μL)
7
表3. 典型的濃縮液體積與離心時間（定角轉子）
離心條件： Amicon® Ultra 3K、10K、30K和50K的超濾管7,500 x g；Amicon® Ultra100K的超濾管
5,000xg。所使用的蛋白質分子量標準：3K和10K為細胞色素c，30K和50K為BSA，100K為IgG，
n=6（3批濾膜的平均值）。 帶灰色背景的體積數值將被用來計算表5中的蛋白回收率。
蛋白質截留率回收率
Amicon® Ultra 超濾管的截留分子量（即標稱分子量限值NMWL）的定義是；截留超過特定分子量的分
子。分子量接近NMWL的溶質可能只有部分被截留。濾膜的截留率取決于溶質的分子大小和形狀。在大
多數應用中，分子量是用來評估截留特性的一個方便的參數。默克密理博公司（Millipore）建議超濾膜的
NMWL應該是想要濃縮的蛋白質溶質分子量的1／2－1／3。
請參見表3。
表4. 蛋白質分子量標準的典型截留率
旋轉時間
（分鐘）
10 613 97 42 23 53
15 – 54 30 – 30
20 170 35 22 15 26
25 118 – – – –
30 92 – – – –
40 62 – – – –
3K超濾管10K超濾管30K超濾管50K超濾管100K超濾管
分子量標準/濃度分子量裝置
NMWL 截留率% 擺桶截留率%
定角
離心時間
（分鐘）
α-胰凝乳蛋白酶原(1 mg/mL) 25,000 3K > 95 > 95 40
細胞色素c (0.25 mg/mL) 12,400 > 95 > 95 40
維他命B-12 (0.2 mg/mL) 1,350 < 35 < 35 40
α-胰凝乳蛋白酶原(1 mg/mL) 25,000 10K > 95 > 95 15
細胞色素 c (0.25 mg/mL) 12,400 > 95 > 95 15
維他命B-12 (0.2 mg/mL) 1,350 < 15 < 15 15
BSA (1 mg/mL) 67,000 30K > 95 > 95 10
卵清蛋白(1 mg/mL) 45,000 > 90 > 90 10
細胞色素c (0.25 mg/mL) 12,400 < 20 < 20 10
維他命B-12 (0.2 mg/mL) 1,350 < 10 < 10 10
BSA (1 mg/mL) 67,000 50K > 95 > 95 10 (SB), 5 (FA)
卵清蛋白(1 mg/mL) 45,000 ~ 60 ~ 65 10 (SB), 5 (FA)
細胞色素c (0.25 mg/mL) 12,400 < 10 < 10 10 (SB), 5 (FA)
甲狀腺球蛋白 (0.5 mg/mL) 677,000 100K > 95 > 95 15
IgG (1 mg/mL) 156,000 > 90 > 90 15
卵清蛋白(1 mg/mL) 45,000 < 25 < 20 15
濃縮液體積(μL)
大多數稀釋蛋白的密度與水的密度幾乎相同（即1 g/mL）。利用這一特性，濃縮液和濾出液的體積可
通過直接稱量并將單位從g轉化成mL來量化。本方法僅適用于濃度不超過20 mg/mL的溶液。
1. 使用之前，分別稱取空的超濾內管和空的濃縮液收集管的重量。
2. 在超濾內管中加入溶液（已測濃度），然后重新稱重。
3. 按說明條件離心。
4. 用移液管收集濃縮液，然后將其注入到已經預先稱重的濃縮液收集管。
5. 取出內管，稱取內管及帶有濾出液的外管的重量。
6. 減去空的內管/外管的重量，計算初始材料、濾過液及濃縮液的重量。
7. 測定濾出液及濃縮液濃度。
吸附損失取決于溶質濃度及疏水性、操作溫度和時間、樣本成分及pH。為了zui大限度降低損失，
離心后請立即回收濃縮后的樣本。
如果樣本的起始濃度很高，請監控離心過程，以免樣本過度濃縮。過度濃縮會導致沉淀和樣本損失。
如果樣本穿過了濾膜，請選擇NMWL較低的Amicon® Ultra-4超濾管。
8
表3和表4的離心條件： 擺桶轉子（4,000 × g, 4 mL起始體積），或者定角轉子（5,000 × g, 4 mL起始
體積），室溫，n=6（3批濾膜的平均值）。
決定樣本回收率的因素包括相對于所選裝置的NMWL的蛋白質溶質的性質、起始濃度和濃縮系數。表4
提供了Amicon® Ultra-4裝置的典型回收率。
表5. 典型的濃縮液回收率
灰色列取自表1和表2。
zui大化樣品回收率
如何量化回收
使用以下方法計算總回收量、濃縮液回收率%及濾出液回收率%。本程序可算出濃度zui高約20mg/mL
的溶液的回收量近似值。
說明： 適當的化驗技術包括吸收分光光度學法、放射免疫檢定法、折光率及傳導性。
直接稱重程序
濃縮液體積
（μL）
濃縮系數
（x）
濃縮液回收率
分子量標準/ （%）
濃度
裝置
NMWL
旋轉時間
（分鐘）
擺桶式定角式擺桶式定角式擺桶式定角式
細胞色素c
(0.25 mg/mL)
3K 40 94 62 43.5 65.0 98.2 96.7
細胞色素c
(0.25 mg/mL) 10K 15 76 54 52.3 76.6 97.3 98.5
BSA (1 mg/mL) 30K 10 73 42 56.1 98.6 95.8 95.0
BSA (1 mg/mL) 50K 10 32 23 137.0 177.4 98.8 92.8
IgG (1 mg/mL) 100K 15 (SB ),
10 (FA) 36 53 115.9 56.8 92.2 91.3
濃縮液的樣本回收率低可能是由于吸附損失、過度濃縮，或樣本穿過濾膜而造成的。
8. 利用重量/體積數據以及所測出的濃度計算回收率，方法如下：
濃縮液回收率% = 100 x WC x CC
WO x CO
濾出液回收率% = 100 x Wf x Cf
WO x CO
總回收率% = 濃縮液回收率% + 濾出液回收率%
Wo = 初始材料的重量 Wc = 分析前濃縮液總重量 Wf = 濾出液的重量
Co = 初始材料的濃度 Cc = 濃縮液的濃度 Cf = 濾出液的濃度
產品規格
zui大初始樣本體積
擺桶和定角轉子（35°和45°）
定角轉子（23°）
zui終濃縮液體積
zui大的相對離心力
擺桶轉子
定角轉子
有效膜面積
尺寸
超濾內管和外管（已蓋上蓋子）
長度
直徑
內管
長度
直徑
超濾管材料
內管
超濾膜
外管
外管蓋子及內襯
4.0mL
3.5mL
50-100 μL
4,000 x g
7,500 x g，（3K、10K、30K、50K）
5,000 x g，（100K）
3.0cm2
124mm
17.3mm
73.4 mm
17.2mm
苯乙烯共聚物/丁二烯
Ultracel® 低蛋白吸附再生纖維素膜
聚丙烯
聚乙烯
9
10
表5. Amicon® Ultra超濾超濾管的化學相容性
乙酸
甲酸
鹽酸
乳酸
硝酸
酸 濃度 濃度
≤ 50%*
≤ 5%*
≤ 1.0 M
≤ 3%
≤ 50%

≤ 30%
≤ 3%
≤ 3%
≤ 10%*
≤ 30%*
堿
氫氧化銨 ≤ 10% 氫氧化鈉 ≤ 0.5 M
醇
正丁醇 ≤ 70% 異丙醇 ≤ 70%
乙醇 ≤ 70% 甲醇 ≤ 60%
Alconox®去污劑
CHAPS去污劑
脫氧膽酸鈉
十二烷基硫酸鈉（SDS）
Tergazyme®去污劑
去污劑
≤ 1%
≤ 0.1%
≤ 5%
≤ 0.1%
≤ 1%
Lubrol® PX去污劑
Nonidet™ P-40表面活性劑
Triton® X-100表面活性劑
Tween® 20表面活性劑
≤ 0.1%
≤ 2%
≤ 0.1%
≤ 0.1%
有機溶劑
丙酮
乙腈
苯


二甲基亞砜（DMSO）
不建議使用
≤ 20%
不建議使用
不建議使用
不建議使用
≤ 5%*
乙酸乙酯
甲醛
吡啶

甲苯
不建議使用
≤ 5%
不建議使用
不建議使用
不建議使用
其他
硫酸銨
焦碳酸二乙酯
二硫蘇糖醇（DTT）
丙三醇
鹽酸胍
咪唑
巰基乙醇
飽和
≤ 0.2%
≤ 0.1 M
≤ 70%
≤ 6 M
≤ 100 mM
≤ 0.1 M
苯酚
磷酸鹽緩沖液（pH 8.2）
聚乙二醇
碳酸鈉
Tris緩沖液（pH 8.2）
尿素
≤ 1%
≤ 1 M
≤ 10%
≤ 20%
≤ 1 M
≤ 8 M
* 與此化學品接觸可能會造成過濾器部件的材料溶出。建議使用空白溶劑來確定滲出物是否有可
能干擾分析。
化學相容性
Amicon® Ultra離心超濾管適用于生物液體和水溶液。在使用前，請檢查樣本是否符合超濾管的化學
相容性。
11
Amicon® Ultra超濾管訂購信息


標準保修
適用于本文件中所列產品的保修條款可垂詢適用于您的購買交易的“購買條款和條件”。
聲明
本文件中的信息隨時可能更改，恕不另行通知，不能將其視為默克公司或其附屬公司的承諾。默克公
司及其任何附屬公司對于本文件中可能出現的任何錯誤概不負責。
(mL)
( μL) 3K 10K 30K 50K 100K
0.5 15–20 Amicon®
Ultra-0.5
device
8
24
96
500
UFC500308
UFC500324
UFC500396
UFC5003BK
UFC501008
UFC501024
UFC501096
UFC5010BK
UFC503008
UFC503024
UFC503096
UFC5030BK
UFC505008
UFC505024
UFC505096
UFC5050BK
UFC510008
UFC510024
UFC510096
UFC5100BK
2 15–70 Amicon®
Ultra-2
device
24 UFC200324 UFC201024 UFC203024 UFC205024 UFC210024
4 50–100 Amicon®
Ultra-4
device
8
24
96
UFC800308
UFC800324
UFC800396
UFC801008
UFC801024
UFC801096
UFC803008
UFC803024
UFC803096
UFC805008
UFC805024
UFC805096
UFC810008
UFC810024
UFC810096
15 150–300 Amicon®
Ultra-15
device
8
24
96
UFC900308
UFC900324
UFC900396
UFC901008
UFC901024
UFC901096
UFC903008
UFC903024
UFC903096
UFC905008
UFC905024
UFC905096
UFC910008
UFC910024
UFC910096
上樣
體積
濃縮后
終體積
品名個/
包
截留分子量
12
附錄
關于Amicon®Ultra超濾管的常見問題與解答
Q: Amicon®Ultra超濾管的膜材質是什么？
A: Amicon®Ultra超濾管的膜材質為默克密理博*的 Ultracel®再生纖維素膜，生產工藝嚴格，截留
分子量明確而，蛋白吸附損失zui小。
Q: 如果要用超濾的方法分離兩種蛋白，那么這兩個蛋白的大小需要相差多少？
A: 按照經驗，建議兩個蛋白的分子量要相差一個數量級（10倍）。
Q: Amicon®Ultra超濾管可以用于病毒濃縮么？
A: 可以。對于慢病毒Amicon®Ultra 100kDa; 對于腺病毒Amicon®Ultra 50kDa。具體的操作
步驟可以參考病毒濃縮純化試劑盒FTLV00003和FTAV00003的產品使用說明書。另提供AAV（腺相關
病毒）的制備方法供參考。
Q: Amicon®Ultra超濾管可以用酒精消毒滅菌么？
A: Amicon®Ultra與70%乙醇是兼容的，但是對滅菌處理的具體方法沒有做相關的測試，所以無
法提供更進一步的參考信息。
Q: Amicon®Ultra超濾裝置是否可以用于高壓滅菌？
A: Amicon®Ultra都是采用熱封設計，不可以用高壓高溫滅菌。
Q: Amicon®Ultra超濾管是否不含RNA酶？
A: 不保證超濾管不包含RNA酶，建議用0.1% DEPC在37度浸泡2小時，以*滅活RNA酶；殘留的DEPC
可以用Milli-Q®超純水洗滌除去。
Q: 用Amicon®Ultra超濾管去除去污劑是有什么需要注意的嗎？
A: 去污劑因其*的性質，當濃度大于臨界微團濃度（Critical Micelle Concentration, CMC）時，去污
劑分子會聚集形成微團而改變分子構象，這有可能會影響去污劑的去除效果，具體的操作步驟請
。
Q: 蛋白在濃縮時出現了沉淀，如何改進？
A: 蛋白如果濃縮過快或者過度濃縮都有可能引起蛋白沉淀。建議蛋白濃縮后的zui終濃度不超過
20mg/ml。對于對濃縮速度敏感而容易沉淀的蛋白，建議的改進方法是：
1） 離心力降為離心力的30%-50%
2） 改用截留分子量更大的超濾管（如原本選用10k，此時可以選擇30k）
3） 在濃縮過程中取出超濾管，用槍頭反復吹吸幾次后再繼續濃縮
Q: 濃縮后發現濃縮液中沒有目的蛋白，可能的原因有哪些？
A: 首先，Amicon®Ultra超濾管的蛋白zui低起始濃度為25ug/ml。請確保樣本的起始濃度大于這個濃
度。其次，如果問題仍然出現，請不要丟棄樣本濾過液以便用于分析可能的原因：
1） 如果目的樣本在濾過液中，那么請排查：
a） 是否選擇了合適截留分子量的超濾管（目的蛋白分子量的1/2或者1/3）？
b） 使用的離心力是否是在限定范圍內？如果使用的是rpm，請換算成相應的g離心力，具體換算方
法請垂詢。
c） 離心機zui近是否有校準過？
13
d） 是否嘗試這個蛋白？如果能確保用同樣的超濾管對其它蛋白成功操作的話，那么有可能是這
個目的蛋白的原因。有時蛋白會因其本身的一些特性（構象差異）而影響濃縮效果，建議選用上
一分子量級別的超濾管（如原本選用30k，此時可以選擇10k）。
2） 如果目的樣本也不在濾過液中，那么：
a） 蛋白樣本起始濃度是否大于25ug/mL？
b） 用來確定樣本濃度的方法是什么？是否可信？
c） 目的蛋白是不是沉淀了？如果是，具體解決方法請參考上面的關于蛋白沉淀問題的解釋。
Q: 有時候用超濾離心管連水都離不下來，可能是什么原因？
A: Amicon®Ultra超濾膜中含有微量甘油。 如果出現這種情況，請先用0.1 N NaOH清洗再離心。zui
后用緩沖液或Milli-Q®水再次清洗后甩干。清洗后的濾膜應立即使用，如暫時不用，請保持潤濕狀
態，避免重新干燥。
Q: 說明書中在室溫下進行離心，考慮到蛋白的穩定性，是否可以在4℃進行離心？
A： 可以，但是低溫會增加蛋白樣品的粘性，導致流速減慢，建議可將離心時間延長到原來的1.5倍。
Q: 如何對超濾管進行去除內毒素的處理？
A： 提供的超濾管是沒有經過去內毒素處理的，同時由于內毒素通常以多聚體的形式存在，大小
在10-1000KD之間不等，在超濾的過程中是無法去除的。可在實驗前通過先用0.5M NaOH預清
洗，隨后用Milli-Q®水/緩沖液清洗的步驟去除大部分內毒素。關于針對Amicon®, Microcon®,
Centricon®嘗試過的內毒素去除方案，
Q: 用濃縮后的蛋白做下游分析時發現有干擾，可能有哪些原因？
A: Amicon®Ultra超濾膜含有微量甘油。如果此成分干擾分析，可用緩沖液或Milli-Q®水預清洗。如
果干擾仍然存在，用0.1 N NaOH清洗，然后用緩沖液或Milli-Q®水再次清洗后甩干。
Q: 懷疑濃縮過程中目的蛋白和超濾膜之間可能存在非特異性吸附，如何改善？
A：Amicon®Ultra超濾管使用的是再生纖維素膜，這種材質是蛋白吸附zui低的超濾膜。但是對于一些
疏 水性蛋白或非極性蛋白，它們和膜的非特異吸附可能會增強，對于這種情況，可以嘗試在實驗前
對超濾管進行封閉處理，也可以嘗試
換成Amicon®Ultra 0.5或2來進行實驗，通過減小膜面積來降低非特異性吸附。
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10mL（提供中文快捷操作指南）
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( 3 次)
簡單即是美
（配合AU0.5小體積超濾管使用）
Amicon® Pro建立小量蛋白樣品純化-換液/除鹽-濃縮流程 新標準
操作步驟的優化與簡化往往帶來更好的結果，數據的穩定性、可比性和高
通量化隨之得以改善。默克生命科學新上市的Amicon® Pro純化超濾管
創造性地將純化、換液、除鹽和濃縮操作融為一體，減少樣品轉移損失和人為
操作的繁瑣和誤差，使蛋白樣品的處理更加標準化，數據結果便于評估和比
較。寶貴的小量樣本從此有了*的操作工具。
步驟少，操作時間短，結果好！
親和純化
6次低速離心，總耗時~100分鐘（含65分鐘孵育時間）
蛋白親和純化（不做換液和濃縮）
3次低速離心，總耗時~75分鐘（含60分鐘孵育時間）
用Protein A或G對抗體進行親和純化
7次低速離心，總耗時~100分鐘（含60分鐘孵育時間）
抗體標記
5次低速離心，總耗時~50分鐘
除鹽/緩沖液置換并濃縮
5次低速離心，總耗時~35分鐘
ACS500024 Amicon® Pro 24Pack（不含AU0.5超濾管）
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Amicon® Pro純化超濾管