一、腹水型單抗的純化
在單抗純化之前，一般均需對腹水進行預處理，目的是為了進一步除去細胞及其殘渣、小顆粒物質、以及脂肪滴等。常用的方法有二氧化硅吸附法和過濾離心法，以前者處理效果為佳，而且操作簡便。
1、二氧化硅吸附法
新鮮采集的腹水（或凍存的腹水），2000r/min 15分鐘，除去細胞成分（或凍存過程中形成的固體物質）等；取上層清亮的腹水，等量加入PH7.2巴比妥緩沖鹽水（VBS；0.004mol/L巴比妥，0.15mol/L NaCl，0.8mmol/L Mg2+，0.3mmol/L Ca2+）稀釋；然后以每10ml稀釋腹水中加150mg二氧化硅粉末，混勻，懸液在室溫孵育30分鐘，不時搖動；2000g離心20分鐘，脂質等通過該法除去，即可得澄清的腹水。
2、過濾離心法
用微孔濾膜過濾腹水，以除去較大的凝塊及脂肪滴；用10000g 15分鐘高速離心（4℃）除去細胞殘渣及小顆粒物質。
3、混合法
即上述兩法的組合，先將腹水高速離心，取上清液再用二氧化硅吸附處理。
二、單抗的粗提
1、硫酸銨沉淀法
（1）飽和硫酸銨溶液的配制
500g硫酸銨加入500ml蒸餾水中，加熱至*溶解，室溫過夜，析出的結晶任其留在瓶中。臨用前取所需的量，用2mol/L NaOH調PH至7.8。
（2）鹽析
吸取10ml處理好的腹水移入小燒杯中，在攪拌下，滴加飽和硫酸銨溶液5.0ml；繼續緩慢攪拌30分鐘；10000r/min離心15分鐘；棄去上清液，沉淀物用1/3飽和度硫酸銨懸浮，攪拌作用30分鐘，同法離心；重復前一步1-2次；沉淀物溶于1.5ml PBS（0.01mol/L PH7.2）或Tris-HCl緩沖液中。
（3）脫鹽
常用柱層析或透析法。柱層析法是將鹽析樣品過Sephadex G-50層析柱，以PBS或Tris-HCl緩沖液作為平衡液和洗脫液，流速每分鐘1ml。*個蛋白峰即為脫鹽的抗體溶液。透析法是將透析袋于2% NaHCO3，1mmol/L EDTA溶液中煮10分鐘，用蒸餾水清洗透析袋內外表面，再用蒸餾水煮透析袋10分鐘，冷至室溫即可使用（并可于0.2mol/L EDTA溶液中，4℃保存備用）。將鹽析樣品裝入透析袋中，對50-100倍體積的PBS或Tris-HCl緩沖液透析（4℃）12-24小時，其間更換 5次透析液，用萘氏試劑（碘化gong11.5g，碘化鉀8g，加蒸餾水50ml，待溶解后，再加20% NaOH 50ml）檢測，直至透析外液無黃色物形成為止。
（4）蛋白質含量的測定
（Pr）（mg/ml）=（1.45×OD280-0.74×OD260）×稀釋倍數；或（Pr）=OD280×稀釋倍數/1.3
（5）分裝凍存備用
2、辛酸-硫酸銨沉淀法
該法簡單易行，適合于提純IgG1和IgG2b，但對IgG3和IgA的回收率及純化效果差。其主要步驟如下：取1份預處理過的腹水加2份 0.06mol/L PH5.0醋酸緩沖液，用1mol/L HCl調PH至4.8；按每毫升稀釋腹水加11ul辛酸的比例，室溫攪拌下逐滴加入辛酸，于30分鐘內加完，4℃靜置2小時，取出15000g離心30分鐘，棄沉淀；上清經尼龍篩過濾（125um），加入1/10體積的0.01mol/L PBS，用1mol/L NaOH調PH至7.2；在4℃下加入飽和硫酸銨至45%飽和度，作用30分鐘，靜置1小時；10000g離心30分鐘，棄上清；沉淀溶于適量PBS（含 137mmol/L NaCl，2.6mol/L KCl，0.2mmol/L EDTA）中，對50-100倍體積的PBS透析，4℃過夜，其間換水3次以上；取出10000g離心30分鐘，除去不溶性沉渣，測定蛋白質含量后，分裝，凍存備用。
3、優球蛋白沉淀法
該法適用于IgG3和IgM型單抗的提取，所獲制品的抗體活性幾乎保持不變，對IgG3單抗的回收率高于90%，對IgM單抗的回收率為 40-90%不等。其操作步驟如下：取一定量的預處理過的腹水，先后加入NaCl和CaCl2，使各自的濃度分別達0.2mol/L和25mmol/L，隨之可見纖維蛋白的產生；經濾紙過濾后，濾液對100倍體積的去離子水透析，4℃ 8-15小時（若是IgG3單抗，也可室溫2小時），其間換水1-2次；取出后22000g離心30分鐘，棄上清；將沉淀溶于PH8.0 1mol/L NaCl，0.1mol/L Tris-HCl溶液中，重復上述的透析與離心；將沉淀的優球蛋白濃度調至5-10mg/ml，分裝凍存備用。
三、單抗純化的方法
單抗純化的方法有很多種，應根據具體單抗的特性和實驗條件選擇適宜的方法，常用的技術有DEAE離子交換層析柱、凝膠過濾法和親和層析法三種。

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