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Western Blot樣品處理方法

閱讀:1103發布時間:2016-11-1

Western Blot樣品處理方法

1.培養的細胞(定性):

  ⑴ 去培養液后用溫的PBS沖洗2~3遍(冷的PBS有可能使細胞脫落)。

  ⑵ 對于6孔板來說每孔加200~300μl,60~80℃的1×loading buffer。

  ⑶ 100℃,1min。

  ⑷ 用細胞刮刮下細胞后在EP管中煮沸10min,期間vortex 2~3次。

  ⑸ 用干凈的針尖挑絲,如有團塊則將團塊棄掉,如果沒有團塊但有拉絲現象,則可以將EP管置于0℃后在14000~16000g離心2min,再次挑絲。若無團塊也無絲狀物但溶液有些粘稠,可通過使用1ml注射器反復抽吸來降低溶液粘滯度,便于上樣。

  ⑹ 待樣品恢復到室溫后上樣。

2.培養的細胞(定量):

  ⑴ 去培養液后用溫的PBS沖洗2~3遍(冷的PBS有可能使細胞脫落)。

  ⑵ 加入適量的冰預冷的裂解液后置于冰上10~20min。

⑶ 用細胞刮刮下細胞,收集在EP管后超聲(100~200w)3s,2次。

⑷ 12000g離心,4℃,2min。

⑸ 取少量上清進行定量。

⑹ 將所有蛋白樣品調至等濃度,充分混合沉淀后加loading buffer后直接上樣,剩余溶液(溶于1×loading buffer)可以低溫儲存,-70℃一個月,-20℃一周,4℃ 1~2天,每次上樣前98℃,3min。

3.組織:

  ⑴ 勻漿  對于心肝脾腎等組織可每50~100mg加1ml裂解液,肺100~200mg加1ml裂解液。可手動或電動勻漿。注意盡量保持低溫,快速勻漿。

⑵ 12000g離心,4℃,2min。

⑶ 取少量上清進行定量。

⑷ 將所有蛋白樣品調至等濃度,充分混合沉淀加loading buffer后直接上樣,剩余溶液(溶于1×loading buffer)可以低溫儲存,-70℃一個月,-20℃一周,4℃ 1~2天,每次上樣前98℃,3min。

(裂解液配方:Tris-Cl (pH7.4) 20mM,EDTA 1mM

由于蛋白酶抑制劑可影響蛋白定量,且新鮮蛋白很少降解,故可不加,如加按建議比例即可。提取磷酸化的蛋白還需加Na3VO4 0.1mM及NaF 25mM)。

1×loading buffer配方:10% 甘油,50mM Tris·Cl (pH6.8),2% β-巰基乙醇,0.2~0.5‰溴酚藍,2%或5%的SDS。Buffer可配成2×~5×,注意SDS終濃度勿超過10%。

對于心臟,肌肉等碎屑較多的組織可用5%的SDS,肝腎等組織2%即可。)

 


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