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技術文章

組織病理實驗步驟

閱讀:1067發布時間:2016-3-11

1.  取材

 

(1)頸椎脫臼法處死小鼠,打開腹腔,剪取肝組織(或其他組織)。

 

(2)切取的組織塊不宜太大,以利于固定劑穿透,通常以5 mm×5 mm×2 mm或10 mm×10 mm×2 mm 為宜。

 

(3)取下所需要的肝組織,切成一小塊2~3 mm 厚。

 

2.  固定

 

(1)將切好的肝組織用生理鹽水組織洗一下

 

(2)立即投入中性福爾馬林固定液中固定

 

(3)固定30~50 min。

 

3.  洗滌

 

材料經固定后,流水沖洗,數小時或過夜。

 

4.  脫水

 

(1)材料依次經70%、80%、90%各級乙醇溶液脫水,各30 min。

 

(2)再放入95%、100%各2次,每次20 min。

 

5.  透明

 

(1)純酒精、二甲苯等量混合液15 min,二甲苯Ⅰ15 min、Ⅱ15 min(至透明為止)。

 

(2)由于乙醇與石蠟不相溶,而二甲苯既能溶于乙醇又能溶于石蠟,所以脫水后還要經過二甲苯以過渡。

 

(3)當組織中全部被二甲苯占有時,光線可以透過,組織呈現出不同程度的透明狀態。

 

6.  透蠟

 

(1)放入二甲苯和石蠟各半的混合液15 min,再放入石蠟Ⅰ、石蠟Ⅱ透蠟各50~60分鐘。

 

(2)透蠟的目的是除去組織中的透明劑(如二甲苯等),使石蠟滲透到組織內部達到飽和程度以便包埋。透蠟時間根據組織大小而定。

 

(3)透蠟應在恒溫箱內進行,并保持箱內溫度在55~60℃左右,注意溫度不要過高,以免組織發脆。一般置于恒溫箱0.5 h。

 

7.  包埋

 

(1)包埋時,用鑷子夾取石蠟模子(金屬質地)在酒精燈上稍加熱,放在平的桌面上。

 

(2)從溫箱中取出盛放純石蠟的蠟杯,倒入少許石蠟。

 

(3)再將鑷子在酒精燈上稍加熱,夾取材料將切面朝下放入蠟模中,排列整齊。

 

(4)再放上包埋盒,輕輕倒入熔蠟。

 

8.  切片

 

(1)將已固定和修好的石蠟塊裝在切片機的夾物臺上。

 

(2)將切片刀固定在刀夾上,刀口向上。

 

(3)搖動推動螺旋,使石蠟塊與刀口貼近,但不可超過刀口。

 

(4)調整石蠟塊與刀口之間的角度與位置,刀片與石蠟切片約成15度左右。

 

(5)調整厚度調節器到所需的切片厚度,一般為4~10微米。

 

(6)一切調整好后主可以開始切片。此時右手搖動轉輪,讓蠟塊切成蠟帶,左手持毛筆將蠟帶提起,搖轉速度不可太急,通常以40~50 r/min。

 

(7)切成的蠟帶到20~30 cm 長時,右手用另一支毛筆輕輕將蠟帶挑起,以免卷曲,并牽引成帶,平放在蠟帶盒上,靠刀面的一面較光滑,朝下,較皺的一面朝上。

 

(8)用單面刀片切取蠟片一小段,放在載玻上加水一滴,置于放大鏡或顯微鏡下觀察切片是否良好。

 

(9)切片工作結束后,應將切片刀取下用擦去刀上沾著的石蠟,把切片機擦拭干凈妥為保存。

 

9.  展片、貼片

 

打開水浴鍋,使水溫維持在40~45℃,另準備30%乙醇溶液。

 

(1)切片時,將一碗30%乙醇溶液放于切片機旁的桌面上。

 

(2)用小鑷子夾取預先用刀片割開的蠟帶,放在乙醇溶液的水面上,使切片展開。

 

(3)小鑷子輕輕地將連在一起的切片分開,用一個載玻片將切片完整,已展開的切片撈至溫水中,使之充分展開。

 

(4)另取潔凈的載玻片,撈起展開的切片,使其位于切片1/3處,另一端(磨邊,粗糙的一端)磨面上標記或貼上標簽,放于切片架上。

 

10.  脫蠟復水

 

(1)將水浴鍋溫度調至60℃,待水溫控制在60℃時。

 

(2)將切片連同切片架放入一干燥的染色缸內,放入水浴鍋中,蓋上蓋子(可密封),30 min 至蠟熔化。

 

(3)之后,石蠟切片經二甲苯Ⅰ、Ⅱ脫蠟各5 min,然后放入100%、95%、90%、80%、70%各級酒精溶液中各3~5 min,再放入蒸餾水中3 min。

 

11.  染色

 

(1)切片放入蘇木精中染色約10~30 min。

 

(2)染色時間應根據染色劑的成熟程度及室溫高低,適當縮短或延長。

 

(3)室溫高時促進染色,染色時間可短些,否則可適當延長時間,冬季室溫低時可放入恒溫箱中染色。

 

12.  水洗

 

(1)用自來水流水沖洗約15 min。

 

(2)使切片顏色變藍(或放入堿性水中也可)。

 

(3)但要注意流水不能過大,以防切片脫落。

 

13.  分化

 

(1)將切片放入1%鹽酸乙醇液中褪色。

 

(2)約2秒至數十秒鐘,見切片變紅,顏色較淺即可。

 

14.  漂洗

 

切片再放入自來水流水中使其恢復藍色。

 

15.  脫水Ⅰ

 

切片入50%乙醇→70%乙醇→80%乙醇中各3~5 min。

 

16.  復染

 

(1)用0.5%伊紅乙醇液對比染色1~3 min。

 

(2)伊紅主要染細胞質,著色濃淡應與蘇木精染細胞核的濃淡相配合,如果細胞核染色較濃,細胞質也應濃染,以獲得鮮明的對比。

 

(3)反之,如果細胞核染色較淺,細胞質也應淡染。可在伊紅乙醇液中滴加數滴冰醋酸助染,促使細胞質容易著色,并且經乙醇脫水時不易褪色。

 

17.  脫水Ⅱ

 

(1)將切片放入95%乙醇中洗去多余的紅色。

 

(2)然后放入無水乙醇中3~5 min。

 

(3)zui后用吸水紙吸干多余的乙醇。

 

18.  透明

 

(1)切片放入二甲苯Ⅰ、Ⅱ中各3~5 min。

 

(2)二甲苯應盡量保持無水,應經常更換,或用紗布包無水硫酸銅放入染色缸內吸收水分。

 

(3)切片如在二甲苯中出現白霧現象,說明脫水未盡,應退回乙醇中重新脫水,否則切片難以鏡檢。

 

19.  封藏:中性樹膠封存

 

因切片經二甲苯透明,使用中性樹膠作為封藏劑,樹膠可用二甲苯稀釋至合適的稠度。

 

20.  封藏的方法:

 

(1)封片前應根據材料的大小,選用不同規格的蓋玻片。

 

(2)材料透明后,在桌上放一張潔凈的吸水紙,將含材料的載玻片從二甲苯中取出放在紙上(切片的一面向上)。

 

(3)迅速地在切片的*滴一滴樹膠(千萬不能待二甲苯干燥后再進行),用右手持小鑷子輕輕地夾住蓋玻片的右側,稍為傾斜使其左側與封藏劑接角,然后再緩慢地將蓋玻片放下,這樣就可以減少或避免產生氣泡。

 

(4)如膠液不足,可以用玻棒再滴一滴樹膠從蓋玻片邊緣補足。

 

(5)如膠液過多,可在干燥以后用刀刮去,并用紗布蘸二甲苯拭去殘留的樹膠。

 

(6)染色結果:細胞核被蘇木素染成藍色,細胞質被伊紅染色呈粉紅色。


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