1、收到細胞，請檢查瓶子是否有決裂，培育基是否漏出，是否污濁，如有請趕快聯絡。
2、收到細胞，如包裝無缺，請在顯微鏡下調查細胞。,因為運送過程中的問題，細胞培育瓶中的貼壁細胞有可能從瓶壁中掉落下來，顯微鏡下調查會呈現細胞懸浮的狀況，呈現此狀況時，請不要翻開細胞培育瓶，先不要把培育基吸出來。應立即將培育瓶置于細胞培育箱里停止3-5小時左右，讓細胞先穩定下，再于顯微鏡下調查，此刻大都細胞會重新貼附于瓶壁。如細胞仍不能貼壁，請用臺盼藍染色法判定細胞生機，如臺盼藍染色證實細胞生機正常請按懸浮細胞的方法處理
3. 收到細胞時如無異常狀況 ，請在顯微鏡下調查細胞密度，如為貼壁細胞，未超越80%匯合度時，用75%酒精（主張裝備75%酒精的水也是滅菌超純水。噴灑整個瓶消毒后放到超菌臺內，嚴厲無菌操作：然后翻開蓋子，先用槍頭把培育基吸出10ML左右，放在離心管里，然后瓶口過火，（禁止直接傾倒），這樣能夠保證不污染，再用10ML的移液管，將剩下的培育基悉數吸出，放于離心管中，培育瓶中只剩下5-10ML左右培育液持續培育就能夠了）：超越80%匯合度時，請按細胞培育條件傳代培育。
如為懸浮細胞，吸出培育液，1000轉/分鐘離心3-5分鐘，吸出上清，管底細胞用新鮮培育基懸浮細胞后移回培育瓶。
4，將培育瓶置于37℃培育箱中培育，蓋子悄悄擰松。吸出的培育基能夠保存在滅菌過的瓶子里，存放于4℃冰箱，以備不時之需。第二天換液時，要制造新鮮的培育基和進口胎牛血清。這樣對細胞成長更好。不要再用咱們原瓶的培育基了。
5 、24小時后，細胞形狀已康復并貼滿瓶壁，就能夠傳代了。（貼壁細胞）將培育瓶里的培育基倒去，加3-5ml（以能掩蓋細胞成長面為準）PBS或Hanks’液洗滌后棄去。加0.5-1ml  0.25%含EDTA的*消化，消化時刻以詳細細胞為準，一般1-3分鐘，不超越5分鐘。能夠放入37℃培育箱消化。悄悄晃動瓶壁，見細胞掉落下來，參加3-5ml培育基停止消化。用移液管悄悄吹打瓶壁上的細胞，使之*掉落，然后將溶液吸入離心管內離心，1000rpm/5min。棄上清，視細胞數量決議分瓶數，一般一傳二，如細胞量多可一傳三，有些細胞不易傳得過稀，有些成長較快的細胞則能夠多傳幾瓶，以詳細細胞和經歷為準。（懸浮細胞）用移液管悄悄吹打瓶壁，直接將溶液吸入離心管離心即可。
6，貼壁細胞 ，懸浮細胞。嚴厲無菌操作。換液時，換新的細胞培育瓶和換新鮮的培育液和進口胎牛血清，37度    5%CO2 培育
7.  收到細胞后，請鏡下調查細胞，用恰當方法處理細胞。若懸浮的細胞較多，請離心搜集細胞，接種到一個新的培育瓶中。棄掉原液，運用新鮮制造的培育基，運用進口胎牛血清. 剛接到細胞，若細胞不多時 血清濃度能夠加到15％去培育。若細胞迏到80%左右 ，血清濃度仍是在10％。