轉(zhuǎn)氫酶-2測(cè)試盒_氧化磷酸化系列
測(cè)定方法：分光光度法
產(chǎn)品規(guī)格：50管/48樣
注 意 ：正式測(cè)定前務(wù)必取2-3個(gè)預(yù)期差異較大的樣本做預(yù)測(cè)定
測(cè)定意義：
TH位于線(xiàn)粒體的內(nèi)膜上，又稱(chēng)為線(xiàn)粒體復(fù)合體六，催化NADH+NADP+和NAD++NADPH相互轉(zhuǎn)化，調(diào)節(jié)線(xiàn)粒體NAD(H)和NADP(H)平衡。把逆向反應(yīng)稱(chēng)為T(mén)H-2，催化NADPH和NAD+生成NADP+和NADH。
測(cè)定原理：
NADH和NADPH均在340nm有特征吸收，因此TH催化的轉(zhuǎn)氫反應(yīng)不能導(dǎo)致340nm吸光度發(fā)生變化。用人工合成底物3-乙酰吡啶腺嘌呤二核苷酸（APAD+）替代NAD+，TH-2催化APAD+還原生成APADH，APADH在375nm有特征光吸收，測(cè)定375nm光吸收的增加速率，來(lái)計(jì)算TH-2活性。
轉(zhuǎn)氫酶-2測(cè)試盒_氧化磷酸化系列
需自備的儀器和用品：
可見(jiàn)分光光度計(jì)、臺(tái)式離心機(jī)、水浴鍋、可調(diào)式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽、冰和蒸餾水。
試劑的組成和配制：
試劑一：液體50mL×1瓶，-20℃保存；
試劑二：液體25mL×1瓶，-20℃保存；
試劑三：液體25mL×2瓶，4℃保存；
試劑四：粉劑×2支，-20℃保存；
試劑五：粉劑×2支，-20℃保存；
樣本的前處理：
組織、細(xì)菌或細(xì)胞中胞漿蛋白與線(xiàn)粒體蛋白的分離：
①準(zhǔn)確稱(chēng)取0.1g組織或收集500萬(wàn)細(xì)菌或細(xì)胞，加入1mL試劑一，用冰浴勻漿器或研缽勻漿。
②將勻漿600g，4℃離心5min。
③棄沉淀，將上清液移至另一離心管中，11100g，4℃離心10min。
④上清液即為除去線(xiàn)粒體的胞漿蛋白，可用于測(cè)定從線(xiàn)粒體泄漏的TH-2（此步可選做）。
⑤步驟④中的沉淀即為線(xiàn)粒體，加入500uL試劑二，超聲波破碎（冰浴，功率20％或200W，超聲3s，間隔10秒，重復(fù)30次），用于TH-2活性測(cè)定。
測(cè)定步驟：
1、分光光度計(jì)預(yù)熱30min以上，調(diào)節(jié)波長(zhǎng)至375nm，蒸餾水調(diào)零。
2、樣本測(cè)定
（1）工作液的配制：臨用前取試劑三、試劑四和試劑五各一支，將試劑四、五轉(zhuǎn)移到試劑三中混合溶解，置于37℃（哺乳動(dòng)物）或25℃（其它物種）水浴5min；用不完的試劑分裝后-20℃保存，禁止反復(fù)凍融。
（2）在1mL玻璃比色皿中加入100μL樣本和1000μL工作液，混勻，立即記錄375nm處初始吸光值A(chǔ)1和10min后的吸光值A(chǔ)2，計(jì)算ΔA=A2-A1。
TH-2活性計(jì)算：
（1） 按樣本蛋白濃度計(jì)算
單位的定義：每mg組織蛋白每分鐘產(chǎn)生1 nmol APADH定義為一個(gè)酶活性單位。
TH-2活性（nmol/min /mg prot）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(V樣×Cpr)÷T=164×ΔA÷Cpr
（2） 按樣本鮮重計(jì)算
單位的定義：每g組織每分鐘產(chǎn)生1 nmol APADH定義為一個(gè)酶活性單位。
TH-2活性（nmol/min/g 鮮重）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(W× V樣÷V樣總) ÷T=82×ΔA÷W
（3） 按細(xì)菌或細(xì)胞密度計(jì)算
單位的定義：每1萬(wàn)個(gè)細(xì)菌或細(xì)胞每分鐘產(chǎn)生1 nmol APADH定義為一個(gè)酶活性單位。
TH-2活性（nmol/min/104 cell）=[ΔA×V反總÷（ε×d）×109]÷(500×V樣÷V樣總) ÷T=0.164×ΔA
V反總：反應(yīng)體系總體積，1.1×10-3L；ε：APADH摩爾消光系數(shù)，6.7×103 L / mol /cm；d：比色皿光徑，1cm；V樣：加入樣本體積，0.1mL；V樣總：加入提取液體積，0.5mL；T：反應(yīng)時(shí)間，10 min；Cpr：樣本蛋白質(zhì)濃度，mg/mL；W：樣本質(zhì)量，g；500：細(xì)菌或細(xì)胞總數(shù)，500萬(wàn)。
環(huán)保在線(xiàn)