ELISA檢測(cè)檢測(cè)樣本收集期間一般都會(huì)要求離樣本心，比如：全血離心取血清或者血漿，組織要?jiǎng)驖{離心取上清，尿液樣本離心取上清，其他相關(guān)液體樣本都有離心取上清。那么問(wèn)題來(lái)了，您是否已經(jīng)掌握好樣本離心的所以方法了呢？本篇文章告訴您所有離心的方法。
（一）差速離心法
它利用不同的粒子在離心力場(chǎng)中沉降的差別，在同一離心條件下，沉降速度不同，通過(guò)不斷增加相對(duì)離心力，使一個(gè)非均勻混合液內(nèi)的大小、形狀不同的粒子分部沉淀。操作過(guò)程中一般是在離心后用傾倒的辦法把上清液與沉淀分開(kāi)，然后將上清液加高轉(zhuǎn)速離心，分離出第二部分沉淀，如此往復(fù)加高轉(zhuǎn)速，逐級(jí)分離出所需要的物質(zhì)。
差速離心的分辨率不高，沉淀系數(shù)在同一個(gè)數(shù)量級(jí)內(nèi)的各種粒子不容易分開(kāi)，常用于其他分離手段之前的粗制品提取。
（二）速率區(qū)帶離心法
速率區(qū)帶離心法是在離心前于離心管內(nèi)先裝入密度梯度介質(zhì)（如蔗糖、甘油、KBr、CsCl等），待分離的樣品鋪在梯度液的頂部、離心管底部或梯度層中間，同梯度液一起離心。離心后在近旋轉(zhuǎn)軸處（X 1 ）的介質(zhì)密度zui小，離旋轉(zhuǎn)軸zui遠(yuǎn)處（X 2 ）介質(zhì)的密度zui大，但zui大介質(zhì)密度必須小于樣品中粒子的zui小密度，即ρ P ＞ρ m 。這種方法是根據(jù)分離的粒子在梯度液中沉降速度的不同，使具有不同沉降速度的粒子處于不同的密度梯度層內(nèi)分成一系列區(qū)帶，達(dá)到彼此分離的目的。梯度液在離心過(guò)程中以及離心完畢后，取樣時(shí)起著支持介質(zhì)和穩(wěn)定劑的作用，避免因機(jī)械振動(dòng)而引起已分層的粒子再混合。
由于ρ P ＞ρ m 可知S＞0，因此該離心法的離心時(shí)間要嚴(yán)格控制，既有足夠的時(shí)間使各種粒子在介質(zhì)梯度中形成區(qū)帶，又要控制在任一粒子達(dá)到沉淀前。如果離心時(shí)間過(guò)長(zhǎng)，所有的樣品可全部到達(dá)離心管底部；離心時(shí)間不足，樣品還沒(méi)有分離。由于此法是一種不*的沉降，沉降受物質(zhì)本身大小的影響較大，一般是應(yīng)用在物質(zhì)大小相異而密度相同的情況。常用的梯度液有Ficoll、Percoll及蔗糖。
（三）等密度離心法
等密度離心法是在離心前預(yù)先配制介質(zhì)的密度梯度，此種密度梯度液包含了被分離樣品中所有粒子的密度，待分離的樣品鋪在梯度液頂上或和梯度液先混合，離心開(kāi)始后，當(dāng)梯度液由于離心力的作用逐漸形成底濃而管頂稀的密度梯度，與此同時(shí)原來(lái)分布均勻的粒子也發(fā)生重新分布。當(dāng)管底介質(zhì)的密度大于粒子的密度，即ρ m ＞ρ P 時(shí)粒子上浮；在彎頂處ρ P ＞ρ m 時(shí)，則粒子沉降，zui后粒子進(jìn)入到一個(gè)它本身的密度位置即ρ P ＝ρ m ，此時(shí)dx/dt為零粒子不再移動(dòng)，粒子形成純組份的區(qū)帶，與樣品粒子的密度有關(guān)，而與粒子的大小和其他參數(shù)無(wú)關(guān)，因此只要轉(zhuǎn)速、溫度不變，則延長(zhǎng)離心時(shí)間也不能改變這些粒子的成帶位置。
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