產品介紹
STEP-PTM-50植物在線光合生理生態監測系統在原有STEP-PTM-48A基礎上升級而來，可長期、自動監測植物的光合速率、蒸騰速率，植物生理生長狀態，環境因子，從而得到植物的全面的信息。
STEP-PTM-50植物在線光合生理生態監測系統具備4個自動開合的葉室，可在20秒內獲得葉片的CO2、H2O交 換速率。標配1個數字通道連接RTH-50多功能傳感器，可測定總輻射、光合有效輻射、空氣溫濕度、露點溫度等。分析單元升級為雙通道測量，新款的PTM-50由之前的1個分析器分時測量，升級為2個獨立分析器，實時測量參比氣和樣品氣的濃度差，增強了對環境CO2、H2O波動的耐受能力，數據更加穩定可靠。可選的植物生理指標監測傳感器以無線方式傳送數據，傳感器可與PC獨立連接，布局更為靈活。可同時配備葉綠素熒光自動監測模塊進行葉綠素熒光實時監測。系統通過2.4GHz RF和3G實現無線通訊和網絡化。
應用領域
應用于植物生理學、生態學、農學、園藝學、作物學、設施農業、節水農業等研究領域
比較不同物種、不同品種的差異
比較不同處理、不同栽培條件對植物的影響
研究植物光合、蒸騰、生長的限制因子
研究生長環境對植物的影響及植物對環境變化的響應
產品測定參數
植株凈光合、總光合、光呼吸、暗呼吸
蒸騰速率
氣孔導度（配合葉溫傳感器）
參比和葉室 CO2 濃度
參比和葉室 H2 O 濃度
葉室空氣流量
水汽壓飽和虧
CO2 同化速率
莖流量、莖桿果實微變化、空氣溫濕度、土壤溫濕度、PAR 等
產品配置
1×PTM-50系統
1×電源適配器
1×蓄電池連接線
1×RTH-50多功能傳感器
4×LC-10R葉室，測量面積10 cm2
4×4米氣體連接管
2×1.5米不銹鋼支架
選配無線傳感器
配套軟件
英文說明書
技術參數
工作方式：自動持續測量
葉室取樣時間：20s
CO2 測量原理：雙通道非色散紅外氣體分析器
CO2 濃度測量范圍：0-1000 ppm
CO2 交換速率的額定測量范圍：-70-70 μmolCO2m-2 s-1
H2O測量原理：集成型空氣溫度和濕度傳感器
葉室空氣流速：0.25L/min
RTH-50 多功能傳感器：溫度-10到60℃；相對濕度：3-99%RH；光合有效輻射：0-2500μmolm-2s-1
測量間隔：5-120分鐘用戶自定義
存儲容量：1200條數據，采樣頻率為30分鐘時可存儲25天
連接管的標準長度：4m
電源：9 到 24 Vdc
通訊方式：2.4GHz RF和3G網絡通訊
環境防護級別：IP55
可選配葉室和傳感器
1. LC-10R 透明葉室：圓形葉室，面積10cm
2 ，空氣流速0.23±0.05L/min 2. LC-10S 透明葉室：矩形葉室，13×77mm，10cm2 ，空氣流速0.23±0.05L/min
3. MP110葉綠素熒光自動監測模塊，可自動監測Ft、QY等葉綠素熒光參數
4. LT-1 葉面溫度傳感器：測量范圍0-50℃
5. LT-4 葉面溫度傳感器：4個LT-1傳感器集成，用以估算葉面平均溫度
6. LT-IRz 紅外溫度傳感器：范圍0-60℃，視野范圍5:1
7. SF-4 植物莖流傳感器：10ml/h，適用于直徑2-5mm莖桿
8. SF-5 植物莖流傳感器：10ml/h，適用于直徑4-10mm莖桿
9. SD-5 莖桿微變化傳感器：行程0到5mm，適用于直徑5-25mm莖桿
10. SD-6 莖桿微變化傳感器：行程0到5mm，適用于直徑2-7cm莖桿
11. SD-10 莖桿微變化傳感器：行程0到10mm，適用于直徑2-7cm莖桿
12. DE-1 樹干生長傳感器：行程0到10mm，適用于直徑6cm以上樹干
13. FI-L 大型果實生長傳感器：范圍30到160mm，適用于圓形果實
14. FI-M 中型果實生長傳感器：范圍15到90mm，適用于圓形果實
15. FI-S 小型果實生長傳感器：范圍7到45mm，適用于圓形果實
16. FI-XS 微型果實生長傳感器：行程0到10mm，適用于直徑4到30mm的圓形果實
17. SA-20 株高傳感器：范圍0到50cm
18. SMTE 土壤水分、溫度、電導率三參數傳感器：0 到 99% vol.% WC ; -40 到 50°C ; 0 到15 dS/m
19. PIR-1 光合有效輻射傳感器：波長400到700nm，光強0到2500μmolm-1s-1
20. TIR-4 總輻射傳感器：波長300到3000nm，輻射0到1200W/m2
21. ST-21 土壤溫度傳感器：范圍0到50°C
22. LWS-2 葉片濕度傳感器：產生與傳感器表面濕度成比例的指示信號
發表文獻
1.Specific features of photorespiration in photosynthetically active organs of C3 plants, NS Balaur, et al. 2013, Russian Journal of Plant Physiology, 60(2): 184-192
2.Online Monitoring and Analysis of Plant Photosynthetic Physiology and Environmental Factors, Zhao Hui Jiang et al., 2012, Applied Mechanics and Materials, 241-244, 75
3.Mycorrhizal association between the desert truffle Terfezia boudieri and Helianthemum sessiliflorum alters plant physiology and fitness to arid conditions, Turgeman T. et al. 2011, Mycorrhiza, 21(7): 623-630
4.Study on compensatory effects of two differential genotypic maize in water stress and re-watering during Filling stage, Yan Y.L. et al. 2011, New Technology of Agricultural Engineering (ICAE), 2011 International Conference
5.FPGA-based Fused Smart Sensor for Real-Time Plant-Transpiration Dynamic Estimation, Millan-Almaraz J.R. et al. 2010, Sensors, 10(9): 8316-8331
6.Effect of elevated CO2 on vegetative and reproductive growth characteristics of the CAM plants Hylocereus undatus and Selenicereus megalanthus，Weiss I. et al. 2010, Scientia Horticulturae，123(4): 531-536
7.Novel technique for component monitoring of CO2 exchange in plants, Balaur N.S. et al. 2009, Russian Journal of Plant Physiology, 56 (3): 423-427
8.Net CO2 uptake rates for Hylocereus undatus and Selenicereus megalanthus under field conditions: Drought influence and a novel method for analyzing temperature dependence, Ben –Asher. J. et al. 2006, Photosynthetica, 44(2): 181-186
宋宗河, 鄭文寅 & 張學昆. (2011). 甘藍型油菜耐旱相關性狀的主成分分析及綜合評價. 中國農業科學 44, 1775–1787.
李婷婷, 江朝暉, 閔文芳, 姜貫楊 & 饒元. (2016).基于基因表達式編程的番茄葉片CO2交換率建模與預測. 浙江農業 學報 28, 1616–1623.
