Triton X-100細胞裂解液產品簡介：
Triton X-100細胞裂解液是一種經典的快速裂解細胞組織并獲得蛋白的裂解液。所獲得的蛋白質可以用于PAGE電泳，Western，免疫沉淀(Immunol Precipitation，IP)和免疫共沉淀(co-IP)等。Triton X-100、NaCl、Tris-HCl等組成，并含有多種蛋白酶抑制劑成分，可以有效抑制蛋白的降解，并維持原有的蛋白間相互作用。作用原理是利用去污劑Triton X-100破壞脂質雙分子層，溶解胞質和細胞膜，破壞分子間微弱結合鍵的大部分蛋白質抗原。其濃度在0.1%～1%時即可滿足幾乎所有溶解的需求，且可補充等離子濃度的鹽及使pH接近中性。不宜用Bradford法測定由Triton X-100 Lysis Buffer獲得樣本的蛋白濃度。
Triton X-100細胞裂解液操作步驟(僅供參考)：
(一)貼壁培養細胞
取Triton X-100 Lysis Buffer室溫溶解混勻，加入PMSF，使PMSF終濃度為1mM。
去培養液，用PBS、NS或無血清培養液清洗1次，低速離心，棄上清，留取沉淀。
按照6孔板每孔加入150～250μl含有PMSF的裂解液的比例加入Triton X-100 Lysis Buffer。移液器輕輕吹打，使裂解液和細胞充分接觸。置于冰上或4℃裂解，通常裂解液作用于細胞1～3s內，細胞就會被裂解。通常6孔板每孔細胞加入150μl裂解液已經足夠，但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到200～250μl。
10000～12000g，4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。
進行后續的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(二)懸浮培養細胞
取Triton X-100 Lysis Buffer室溫溶解混勻，加入PMSF，使PMSF終濃度為1mM。
低速離心懸浮細胞，棄上清，收集沉淀。
用手指輕彈細胞，使其松散。按照6孔板每孔細胞加入150～250μl含有PMSF的裂解液的比例，加入Leagene Triton X-100 Lysis Buffer 。通常6孔板每孔細胞加入150μl裂解液已經足夠，但如果細胞密度非常高可以適當加大裂解液的用量到200～250μl。再用手指輕彈以充分裂解細胞，充分裂解后應沒有明顯的細胞沉淀。
10000～12000g， 4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。
進行后續的SDS-PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
(三)組織樣本
取Triton X-100 Lysis Buffer室溫溶解混勻后，加入PMSF，使PMSF終濃度為1mM。
把*切成細小的碎片，越小越好。
取在液氮或超低溫冰箱中冷凍30min以上的組織，迅速用液氮研磨，研磨過程盡量控制在1～2min之內，以減少蛋白的降解。
按照每20mg組織加入150～250μl裂解液的比例加入含有PMSF的裂解液。冰上或4℃裂解15～30min。
步驟3、4亦可以采用如下過程：按照每20mg組織加入150～250μl裂解液的比例加入含有PMSF的Triton X-100 Lysis Buffer。用玻璃勻漿器或組織研磨器勻漿，直至充分裂解，該過程盡量控制在1～2min之內，以減少蛋白的降解。
10000～12000g，4℃離心5～10min(如無低溫離心機，室溫下離心亦可)，取上清。
進行后續的PAGE、Western、免疫沉淀和免疫共沉淀等操作。
Triton X-100細胞裂解液注意事項：
去除貼壁細胞的培養液后，如果血清中的蛋白沒有干擾，可以不用清洗。
如果裂解不充分可以適當增加裂解液的用量，如果需要高濃度的蛋白樣品，可以適當減少裂解液的用量。
如果細胞量較多，必需分裝成50～100萬細胞/離心管，然后再裂解。大團的細胞較難裂解充分，而少量的細胞由于裂解液容易和細胞充分接觸，相對比較容易裂解充分。
如果組織樣品本身非常細小，可以適當剪切后直接加入裂解液裂解，通過強烈Vortex使樣品裂解充分。然后同樣離心取上清，用于后續實驗。直接裂解的優點是比較方便，不必使用勻漿器，缺點是不如使用勻漿器那樣裂解得比較充分。
溶解Triton X-100 Lysis Buffer時，應盡量縮短溶解時間，避免有效成分失效。
裂解產物中經常會出現一小團透明膠狀物，屬正常現象。該透明膠狀物為含有基因組DNA等的復合物。在不檢測和基因組DNA結合特別緊密的蛋白的情況下，可以直接離心取上清用于后續實驗。如果需要檢測和基因組結合特別緊密的蛋白，則可以通過超聲處理打碎打散該透明膠狀物，隨后離心取上清用于后續實驗。如果檢測一些常見的轉錄因子，例如NF-KB、p53等時，通常不必進行超聲處理，就可以檢測到這些轉錄因子。
細胞裂解的操作步驟，應置于冰上或4℃進行。
